摘要 | 第8-11页 |
SUMMARY | 第11-14页 |
缩略词表 | 第15-16页 |
第一部分 文献综述 | 第16-32页 |
第一章 消化道黏膜免疫概述 | 第16-20页 |
1 肠淋巴集结的分布及形态特征 | 第16-17页 |
2 肠淋巴集结的发育及功能特征 | 第17-19页 |
3 肠淋巴集结的黏膜免疫调节特征 | 第19-20页 |
第二章 消化道黏膜免疫中的主要效应分子 | 第20-24页 |
1 IgA及其转运受体 | 第20-22页 |
1.1 IgA的物理性质及生物学功能 | 第20-21页 |
1.2 pIgR的物理性质及生物学功能 | 第21-22页 |
2 IgG及其转运受体 | 第22-24页 |
2.1 IgG的物理性质及生物学功能 | 第22页 |
2.2 FcRn的物理性质及生物学功能 | 第22-24页 |
第三章 消化道微生物对黏膜免疫的作用 | 第24-28页 |
1 微生物在胃肠道中的分布特征 | 第24-25页 |
1.1 微生物分布随肠段的变化 | 第24页 |
1.2 胃肠生理功能对微生物的影响 | 第24-25页 |
2 微生物对胃肠道免疫功能的影响 | 第25-28页 |
2.1 肠道微生物菌群对病原菌的作用 | 第25-26页 |
2.2 肠道微生物菌群对机体免疫系统的作用 | 第26-28页 |
第四章 双峰驼ALNA研究进展及本研究目的意义 | 第28-32页 |
1 双峰驼胃研究概况 | 第28-29页 |
1.1 皱胃基本结构 | 第28页 |
1.2 皱胃生物学功能 | 第28-29页 |
2 双峰驼ALNA研究进展 | 第29页 |
3 本研究目的及意义 | 第29-32页 |
第二部分 实验研究部分 | 第32-132页 |
第一章 IgA~+和IgG~+细胞在双峰驼ALNA的分布及随年龄的变化 | 第32-50页 |
1 材料和方法 | 第33-35页 |
1.1 材料 | 第33-34页 |
1.1.1 实验动物 | 第33页 |
1.1.2 药品与试剂 | 第33-34页 |
1.1.3 主要仪器 | 第34页 |
1.2 方法 | 第34-35页 |
1.2.1 切片制作 | 第34页 |
1.2.2 光镜观察 | 第34页 |
1.2.3 统计分析 | 第34-35页 |
2 结果 | 第35-47页 |
2.1 IgA~+与IgG~+细胞在不同年龄双峰驼ALNA的分布特征 | 第35-46页 |
2.2 IgA`+与IgG~+细胞的分布密度随年龄的变化特征 | 第46-47页 |
3 讨论 | 第47-48页 |
4 小结 | 第48-50页 |
第二章 FcRn在不同年龄双峰驼ALNA的表达与定位 | 第50-68页 |
1 材料和方法 | 第51-52页 |
1.1 材料 | 第51-52页 |
1.1.1 实验动物 | 第51页 |
1.1.2 药品与试剂 | 第51页 |
1.1.3 主要仪器 | 第51-52页 |
1.2 方法 | 第52页 |
1.2.1 切片制作 | 第52页 |
1.2.2 光镜观察 | 第52页 |
1.2.3 统计分析 | 第52页 |
2 结果 | 第52-65页 |
2.1 FcRn在不同年龄双峰驼ALNA的表达特征 | 第52-63页 |
2.2 FcRn在不同年龄双峰驼ALNA黏膜上皮中的表达量 | 第63-65页 |
2.2.1 FcRn的表达量 | 第63页 |
2.2.2 FcRn的增龄性变化趋势 | 第63-65页 |
3 讨论 | 第65-66页 |
4 小结 | 第66-68页 |
第三章 基于 16S rDNA的双峰驼ALNA微生物多样性研究 | 第68-102页 |
1 材料和方法 | 第69-73页 |
1.1 材料 | 第69-70页 |
1.1.1 实验动物 | 第69页 |
1.1.2 药品与试剂 | 第69页 |
1.1.3 主要仪器 | 第69-70页 |
1.2 方法 | 第70-71页 |
1.2.1 双峰驼ALNA与回肠PPs区微生物样品准备 | 第70页 |
1.2.2 样品总DNA的提取与检测方法 | 第70页 |
1.2.3 16S rDNA文库制备 | 第70-71页 |
1.2.4 库检与测序 | 第71页 |
1.3 测序数据过滤与质量控制 | 第71-72页 |
1.3.1 Raw Reads过滤 | 第71-72页 |
1.3.2 Clean Reads质量评估及其拼接 | 第72页 |
1.4 OTU聚类分析及注释 | 第72-73页 |
1.5 多样性及群落结构分析 | 第73页 |
2 结果 | 第73-98页 |
2.1 样品总DNA提取结果 | 第73-74页 |
2.2 数据过滤统计 | 第74-78页 |
2.3 测序数据质量值分布 | 第78-79页 |
2.4 序列拼接 | 第79-81页 |
2.4.1 数据统计 | 第79-81页 |
2.4.2 拼接后序列长度分布 | 第81页 |
2.5 OTUs分析 | 第81-82页 |
2.6 OTUs交叠Venn图 | 第82-83页 |
2.7 物种分布柱状图 | 第83-85页 |
2.8 样品聚类树图 | 第85页 |
2.9 样本聚类柱状图 | 第85-87页 |
2.10 进化树分析 | 第87页 |
2.11 Alpha多样性分析 | 第87-89页 |
2.12 组间Alpha多样性比较结果 | 第89-90页 |
2.13 样品组间显著性差异分析 | 第90-98页 |
2.13.1 门水平分类组间差异 | 第90-91页 |
2.13.2 纲水平分类组间差异 | 第91-92页 |
2.13.3 目水平分类组间差异 | 第92-94页 |
2.13.4 科水平分类组间差异 | 第94-96页 |
2.13.5 属水平分类组间差异 | 第96-98页 |
2.13.6 种水平分类组间差异 | 第98页 |
3 讨论 | 第98-99页 |
4 小结 | 第99-102页 |
第四章 基于iTRAQ的双峰驼ALNA的定量蛋白质组学研究 | 第102-132页 |
1 材料和方法 | 第103-108页 |
1.1 材料 | 第103-104页 |
1.1.1 实验动物 | 第103页 |
1.1.2 药品与试剂 | 第103-104页 |
1.1.3 主要仪器 | 第104页 |
1.2 方法 | 第104-108页 |
1.2.1 双峰驼蛋白质组样品准备 | 第104页 |
1.2.2 iTRAQ试剂结构及定量蛋白质组学原理 | 第104-105页 |
1.2.3 蛋白质提取与定量 | 第105页 |
1.2.4 蛋白质消化及iTRAQ标记 | 第105-106页 |
1.2.5 肽段分离及LC-MS/MS分析 | 第106-107页 |
1.2.6 蛋白质组数据的生物信息学分析 | 第107-108页 |
2 结果 | 第108-128页 |
2.1 组织样品的SDS-PAGE检测及浓度测定 | 第108-110页 |
2.2 蛋白鉴定中肽段匹配误差分布结果 | 第110页 |
2.3 蛋白鉴定结果统计 | 第110-111页 |
2.4 蛋白质相对分子质量分布 | 第111页 |
2.5 肽段序列长度分布 | 第111-112页 |
2.6 肽段序列覆盖度 | 第112页 |
2.7 Unique肽段数量分布 | 第112-113页 |
2.8 蛋白质丰度比分布 | 第113-114页 |
2.9 重复性分布图 | 第114页 |
2.10 定量信息统计 | 第114-115页 |
2.11 鉴定蛋白的GO注释 | 第115-116页 |
2.12 鉴定总蛋白的COG注释 | 第116-117页 |
2.13 鉴定总蛋白质代谢通路注释 | 第117-120页 |
2.14 差异蛋白的GO富集分析及蛋白质互做网络分析 | 第120-126页 |
2.14.1 网格区与纵行区差异蛋白的GO富集 | 第120-122页 |
2.14.2 网格区与纵行区差异蛋白互作网络分析 | 第122页 |
2.14.3 网格区与回肠PPs区差异蛋白的GO富集 | 第122-123页 |
2.14.4 网格区与回肠PPs区差异蛋白互作网络分析 | 第123-124页 |
2.14.5 纵行区与回肠PPs区差异蛋白的GO富集 | 第124-125页 |
2.14.6 纵行区区与回肠PPs区差异蛋白互作网络分析 | 第125-126页 |
2.15 差异蛋白的路径富集分析 | 第126-128页 |
3 讨论 | 第128-129页 |
4 小结 | 第129-132页 |
全文结论 | 第132-134页 |
参考文献 | 第134-156页 |
致谢 | 第156-158页 |
个人简介 | 第158-160页 |
导师简介 | 第160-161页 |