摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
第1章 绪论 | 第10-16页 |
1.1 研究背景 | 第10-11页 |
1.2 EPR效应理论 | 第11-12页 |
1.3 肿瘤微循环系统 | 第12-13页 |
1.3.1 肿瘤微循环血管系统 | 第12-13页 |
1.3.2 肿瘤微循环淋巴管系统 | 第13页 |
1.4 课题意义 | 第13-14页 |
1.5 本课题主要研究内容 | 第14-16页 |
第2章 小鼠S180移植瘤模型的建立 | 第16-26页 |
2.1 实验仪器与材料 | 第16页 |
2.1.1 实验仪器 | 第16页 |
2.1.2 实验材料 | 第16页 |
2.1.3 实验动物 | 第16页 |
2.1.4 实验细胞株 | 第16页 |
2.2 实验方法 | 第16-19页 |
2.2.1 S180腹水瘤细胞的体内培养 | 第16-18页 |
2.2.2 小鼠S180移植瘤模型的建立 | 第18-19页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第19-23页 |
2.3.1 昆明小鼠生长情况 | 第19页 |
2.3.2 小鼠移植瘤生长情况 | 第19-23页 |
2.4 本章小结 | 第23-26页 |
第3章 毛细血管及毛细淋巴管在移植瘤中的分布研究 | 第26-38页 |
3.1 实验仪器与材料 | 第26-27页 |
3.1.1 实验仪器 | 第26页 |
3.1.2 实验材料 | 第26-27页 |
3.1.3 实验动物 | 第27页 |
3.2 实验方法 | 第27-30页 |
3.2.1 组织切片的制备 | 第27-28页 |
3.2.2 HE染色 | 第28页 |
3.2.3 SP法免疫组化染色 | 第28-30页 |
3.2.4 对照 | 第30页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第30-35页 |
3.3.1 HE染色结果 | 第30页 |
3.3.2 免疫组化方法的选择 | 第30-31页 |
3.3.3 免疫组化抗原条件优化 | 第31-32页 |
3.3.4 毛细血管内皮细胞特异性标记物CD34标记结果 | 第32-34页 |
3.3.5 毛细淋巴管内皮细胞特异性标记物LYVE-1 标记结果 | 第34-35页 |
3.4 本章小结 | 第35-38页 |
第4章 毛细血管与毛细淋巴管超微结构的观察 | 第38-50页 |
4.1 实验仪器与材料 | 第38页 |
4.1.1 实验仪器 | 第38页 |
4.1.2 实验材料 | 第38页 |
4.1.3 实验动物 | 第38页 |
4.2 实验方法 | 第38-39页 |
4.2.1 取材 | 第38-39页 |
4.2.2 电镜样品制备方法 | 第39页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第39-48页 |
4.3.1 S180荷瘤小鼠肿瘤组织癌细胞超微结构的变化 | 第39-41页 |
4.3.2 S180荷瘤小鼠肿瘤组织血管超微结构的变化 | 第41-43页 |
4.3.3 S180荷瘤小鼠肿瘤组织血管裂隙的变化 | 第43-45页 |
4.3.4 S180荷瘤小鼠肿瘤组织中毛细淋巴管超微结构的变化 | 第45-48页 |
4.4 本章小结 | 第48-50页 |
第5章 阿霉素脂质体在不同时期肿瘤组织中药物浓度 | 第50-56页 |
5.1 仪器与材料 | 第50页 |
5.1.1 仪器 | 第50页 |
5.1.2 材料 | 第50页 |
5.1.3 实验动物 | 第50页 |
5.2 方法与结果 | 第50-54页 |
5.2.1 肿瘤组织药物检测方法学研究 | 第50-53页 |
5.2.2 经尾静脉注射药物浓度的检测 | 第53-54页 |
5.3 本章小结 | 第54-56页 |
结论 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-64页 |
攻读硕士学位期间所发表的论文 | 第64-66页 |
致谢 | 第66页 |