摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
1 文献综述 | 第12-19页 |
1.1 富营养化水体简介 | 第12-13页 |
1.2 富营养化水体评价 | 第13页 |
1.3 富营养化水体治理技术 | 第13-14页 |
1.3.1 物理处理法 | 第13-14页 |
1.3.2 化学处理法 | 第14页 |
1.3.3 生物修复技术 | 第14页 |
1.4 生物修复技术中利用的微生物 | 第14-15页 |
1.4.1 可培养微生物 | 第14-15页 |
1.4.2 难培养微生物 | 第15页 |
1.4.3 活的非可培养微生物 | 第15页 |
1.5 VBNC菌研究概况 | 第15-18页 |
1.5.1 VBNC菌的发现 | 第15-16页 |
1.5.2 VBNC菌的形成机理 | 第16页 |
1.5.3 VBNC菌的复苏可培养化 | 第16-17页 |
1.5.4 复苏活化的VBNC菌潜在环境功能及应用前景 | 第17-18页 |
1.6 本研究的主要内容及意义 | 第18页 |
1.7 本研究主要技术路线 | 第18-19页 |
2 生物膜反应器处理富营养化水的能力 | 第19-27页 |
2.1 实验材料与方法 | 第19-22页 |
2.1.1 富营养化水的配置 | 第19页 |
2.1.2 生物反应器的构建与运行 | 第19-20页 |
2.1.3 实验水样采集及处理 | 第20-21页 |
2.1.4 实验主要药剂与器材 | 第21-22页 |
2.1.5 实验方法 | 第22页 |
2.2 实验结果与讨论 | 第22-26页 |
2.2.1 总磷的去除效果及分析 | 第23-24页 |
2.2.2 总氮的去除效果及分析 | 第24-25页 |
2.2.3 叶绿素a的去除效果及分析 | 第25-26页 |
2.3 本章小结 | 第26-27页 |
3 利用Rpf和MPN培养体系富集分离优势菌群 | 第27-41页 |
3.1 实验材料与方法 | 第27-36页 |
3.1.1 实验样品的采集与预处理 | 第27页 |
3.1.2 含Rpf活性蛋白培养上清液的制备 | 第27-28页 |
3.1.3 实验主要药剂与器材 | 第28-30页 |
3.1.4 实验用培养基组成 | 第30-31页 |
3.1.5 实验方法 | 第31-32页 |
3.1.5.1 MPN培养体系 | 第31-32页 |
3.1.5.2 Rpf效果与VBNC状态菌的判断 | 第32页 |
3.1.6 菌株的分离纯化与保存 | 第32-33页 |
3.1.7 分离菌株基因组DNA提取 | 第33-35页 |
3.1.8 目的片段PCR扩增与纯化 | 第35-36页 |
3.1.8.1 16S rDNA的扩增 | 第35页 |
3.1.8.2 PCR反应液的纯化 | 第35-36页 |
3.1.9 分离菌株的系统发育关系树构建 | 第36页 |
3.2 实验结果与讨论 | 第36-39页 |
3.2.1 Rpf对生物膜反应器处理系统中微生物的复苏作用 | 第36-37页 |
3.2.2 生物处理系统中菌株的分离结果 | 第37-38页 |
3.2.3 分离菌株的系统发育分析 | 第38-39页 |
3.2.4 分离菌株的潜在环境功能 | 第39页 |
3.3 本章小结 | 第39-41页 |
4 DGGE对MPN培养体系中微生物组成的分子水平解析 | 第41-50页 |
4.1 实验材料与方法 | 第41-46页 |
4.1.1 实验样品 | 第41页 |
4.1.2 实验主要药剂与器材 | 第41-43页 |
4.1.3 实验方法 | 第43-46页 |
4.1.3.1 运用细菌全基因组提取试剂盒提取目的DNA | 第43-44页 |
4.1.3.2 MPN培养体系16S rDNAV3区PCR扩增 | 第44-45页 |
4.1.3.3 实验变性梯度凝胶的配制 | 第45页 |
4.1.3.4 MPN培养体系中PCR产物的变性梯度凝胶电泳 | 第45页 |
4.1.3.5 优势条带的选取和切胶回收测序 | 第45-46页 |
4.2 实验结果与讨论 | 第46-49页 |
4.2.1 目标基因组DNA扩增效果 | 第46页 |
4.2.2 MPN培养体系中实验组与对照组主要微生物群落多样性比较 | 第46-48页 |
4.2.3 目的条带克隆测序结果 | 第48-49页 |
4.3 本章小结 | 第49-50页 |
5 结论与展望 | 第50-52页 |
5.1 结论 | 第50-51页 |
5.2 展望 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
攻读硕士学位期间取得的成果 | 第61-62页 |