| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-13页 |
| 1. 引言 | 第13-16页 |
| 2. 实验材料 | 第16-20页 |
| 2.1. 实验动物 | 第16页 |
| 2.2. 实验仪器 | 第16-17页 |
| 2.3. 实验试剂 | 第17-19页 |
| 2.4 细胞培养试剂 | 第19-20页 |
| 3. 实验方法 | 第20-36页 |
| 3.1. 细胞培养 | 第20-21页 |
| 3.2. 流式细胞仪检测 | 第21-22页 |
| 3.3. 收集条件培养基 | 第22页 |
| 3.4. TUNEL染色 | 第22页 |
| 3.5. 管腔形成实验 | 第22页 |
| 3.6. 收集外泌体 | 第22-23页 |
| 3.7. 电子显微镜观测 | 第23页 |
| 3.8. PKH-26染色 | 第23页 |
| 3.9. 外泌体MICRORNA芯片检测 | 第23-24页 |
| 3.10. 慢病毒在体构建、病毒包装和感染 | 第24-27页 |
| 3.11. 聚合酶链式反应 | 第27-30页 |
| 3.12. WESTERN BLOT | 第30-33页 |
| 3.13. 大鼠心梗模型的建立和细胞移植 | 第33页 |
| 3.14. 小动物心脏超声检测 | 第33-34页 |
| 3.15. 组织学检测 | 第34-35页 |
| 3.16. 统计学方法 | 第35-36页 |
| 4. 结果 | 第36-59页 |
| 4.1. 人BMMSCs,ADMSCs和ENMSCs形态及鉴定 | 第36-37页 |
| 4.2. ENMSCs对于靶细胞能发挥最好的心脏保护作用 | 第37-39页 |
| 4.3. ENMSCs移植对于大鼠心梗模型具有最显著的疗效 | 第39-45页 |
| 4.4. 外泌体的形态和表面标记的检测以及其被靶细胞内吞的效果 | 第45-46页 |
| 4.5. ENMSCs分泌的外泌体中的MICRORNA-21含量最高 | 第46-48页 |
| 4.6. ENMSCs外泌体中的MICRORNA-21通过PTEN激活心脏保护相关通路 | 第48-50页 |
| 4.7. 进一步验证ENMSCs外泌体中的MICRORNA-21在心脏保护中的作用 | 第50-59页 |
| 5. 讨论 | 第59-67页 |
| 6. 参考文献 | 第67-75页 |
| 综述 | 第75-101页 |
| 1. 引言 | 第76-78页 |
| 2. 外泌体的结构和功能 | 第78-81页 |
| 3. 外泌体在心血管系统中的作用 | 第81-87页 |
| 4. 外泌体是治疗心血管疾病的新方法 | 第87页 |
| 5. 结论 | 第87-88页 |
| 6. 参考文献 | 第88-101页 |
| 作者简介 | 第101页 |
