| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-28页 |
| 1 生物固氮的概念和意义 | 第14-15页 |
| 1.1 生物固氮的方式 | 第14页 |
| 1.2 豆科植物-根瘤菌共生固氮体系 | 第14-15页 |
| 2 豆科植物-根瘤菌共生体系的建立 | 第15-20页 |
| 2.1 根瘤形成过程 | 第15-16页 |
| 2.2 参与共生固氮的根瘤菌基因 | 第16-17页 |
| 2.3 参与共生固氮的植物基因 | 第17-20页 |
| 3 低磷胁迫对豆科植物-根瘤菌共生固氮体系的影响 | 第20-26页 |
| 3.1 土壤低磷问题 | 第21页 |
| 3.2 低磷对豆科植物结瘤及固氮功能的直接影响 | 第21-22页 |
| 3.3 氮反馈机制 | 第22-23页 |
| 3.4 低磷胁迫下根瘤维持磷稳态的机理 | 第23-26页 |
| 4 改善共生固氮的途径 | 第26-28页 |
| 第二章 根瘤菌的分离、纯化及结瘤实验 | 第28-42页 |
| 1 材料与方法 | 第29-32页 |
| 1.1 试验材料 | 第29页 |
| 1.2 试验方法 | 第29-32页 |
| 2 结果 | 第32-39页 |
| 2.1 菌落特征 | 第32页 |
| 2.2 根瘤菌DNA的提取及IGS基因的PCR扩增 | 第32-33页 |
| 2.3 IGS基因序列的生物信息学分析 | 第33-37页 |
| 2.4 结瘤实验结果 | 第37-39页 |
| 3 讨论 | 第39-42页 |
| 第三章 不同磷水平对菜用大豆结瘤固氮的影响 | 第42-54页 |
| 1 材料与方法 | 第43-46页 |
| 1.1 试验材料 | 第43-44页 |
| 1.2 试验方法 | 第44-46页 |
| 2 结果 | 第46-52页 |
| 2.1 不同低磷水平对菜用大豆植株生长和结瘤的影响 | 第46-48页 |
| 2.2 不同低磷水平对菜用大豆各器官有机磷、总磷和总氮含量的影响 | 第48-50页 |
| 2.3 低磷处理对结瘤相关基因表达的影响 | 第50-52页 |
| 3 讨论 | 第52-54页 |
| 3.1 低磷抑制菜用大豆植株的生长、根瘤的生长发育及固氮能力 | 第52页 |
| 3.2 低磷抑制结瘤关键基因的表达 | 第52-54页 |
| 第四章 OsPT2基因过表达对低磷胁迫下菜用大豆共生固氮的影响 | 第54-72页 |
| 1 材料与方法 | 第55-59页 |
| 1.1 试验材料 | 第55-56页 |
| 1.2 试验方法 | 第56-59页 |
| 2 结果 | 第59-67页 |
| 2.1 转基因植株的PCR鉴定 | 第59-61页 |
| 2.2 植株生物量、产量及结瘤表现 | 第61-63页 |
| 2.3 植株各器官有效磷、总磷、总氮及酰脲含量 | 第63-64页 |
| 2.4 植株谷氨酰胺合成酶活性及豆血红蛋白含量 | 第64-65页 |
| 2.5 结瘤固氮及氮同化相关基因的表达 | 第65-67页 |
| 3 讨论 | 第67-72页 |
| 3.1 OsPT2基因过表达促进转基因菜用大豆根瘤的生长发育 | 第67页 |
| 3.2 OsPT2基因过表达增强转基因菜用大豆的固氮能力和氨同化效率 | 第67-68页 |
| 3.3 OsPT2基因过表达有利于转基因菜用大豆根瘤磷稳态的维持 | 第68-72页 |
| 全文结论 | 第72-74页 |
| 创新之处 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-92页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
