| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-14页 |
| 序论 | 第14-18页 |
| 第1章 常规基因转染与反向基因转染的比较研究 | 第18-37页 |
| ·仪器与试剂 | 第18-19页 |
| ·仪器 | 第18页 |
| ·试剂 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-23页 |
| ·普鲁兰糖-精胺的合成 | 第19页 |
| ·质粒DNA的扩增 | 第19页 |
| ·普鲁兰糖-精胺/DNA复合物的制备 | 第19页 |
| ·复合物的粒径与Zeta电位测定 | 第19-20页 |
| ·细胞培养与鉴定 | 第20页 |
| ·常规转染 | 第20-21页 |
| ·阴离子化明胶合成 | 第21页 |
| ·阴离子化明胶取代度与Zeta电位测定 | 第21页 |
| ·反向转染 | 第21页 |
| ·反向转染体系表征 | 第21-22页 |
| ·反向转染效果影响因素 | 第22页 |
| ·普鲁兰糖-精胺/DNA复合物细胞毒性检测 | 第22-23页 |
| ·普鲁兰糖-精胺/DNA复合物入胞机制考察 | 第23页 |
| ·实验结果与讨论 | 第23-35页 |
| ·普鲁兰糖-精胺表征 | 第23-24页 |
| ·粒径及电位测定 | 第24-25页 |
| ·MSC鉴定 | 第25-26页 |
| ·常规转染与反向转染对比 | 第26-28页 |
| ·阴离子化明胶的表征 | 第28-29页 |
| ·反向转染效果影响因素 | 第29-31页 |
| ·反向转染中的基因释放 | 第31-32页 |
| ·反向转染中的血清蛋白排斥 | 第32-33页 |
| ·普鲁兰糖-精胺/DNA纳米粒细胞毒性 | 第33-34页 |
| ·普鲁兰糖-精胺/DNA复合物入机制 | 第34-35页 |
| ·小结 | 第35-37页 |
| 第2章 细胞支架的表征及三维转染体系的体外评价 | 第37-51页 |
| ·仪器与试剂 | 第37-38页 |
| ·仪器 | 第37页 |
| ·试剂 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-40页 |
| ·三维转染 | 第38页 |
| ·三维转染体系形态观察 | 第38页 |
| ·三维转染体系中TGF-β1表达 | 第38-39页 |
| ·组织染色 | 第39页 |
| ·壳聚糖温敏凝胶的制备 | 第39页 |
| ·壳聚糖温敏凝胶的表征 | 第39页 |
| ·明胶海绵的制备 | 第39-40页 |
| ·明胶海绵的表征 | 第40页 |
| ·实验结果与讨论 | 第40-50页 |
| ·三维转染体系形态 | 第40-43页 |
| ·三维转染效果 | 第43-44页 |
| ·细胞在三维支架上生长状况 | 第44-46页 |
| ·组织染色 | 第46-47页 |
| ·β-甘油磷酸钠浓度对壳聚糖温敏凝胶化时间的影响 | 第47-49页 |
| ·明胶海绵的表征 | 第49-50页 |
| ·小结 | 第50-51页 |
| 第3章 携载治疗基因的MSC的体内软骨缺损修复效果评价 | 第51-59页 |
| ·仪器与试剂 | 第51页 |
| ·仪器 | 第51页 |
| ·试剂 | 第51页 |
| ·实验方法 | 第51-53页 |
| ·软骨缺损模型构建 | 第51页 |
| ·携载TGF-β1基因的MSC大鼠软骨缺损治疗实验 | 第51-52页 |
| ·软骨损伤修复效果评价 | 第52-53页 |
| ·结果与讨论 | 第53-58页 |
| ·整体动物观察 | 第53页 |
| ·软骨损伤面大举观察 | 第53-55页 |
| ·组织染色 | 第55-58页 |
| ·GAG含量测定 | 第58页 |
| ·小结 | 第58-59页 |
| 全文小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 综述 | 第66-80页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 作者简介 | 第80页 |
| 攻读期成果 | 第80-81页 |