| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 上篇 文献综述 | 第9-25页 |
| 第一章 运动蛋白移动的研究概况 | 第10-14页 |
| ·植物病毒的移动 | 第10页 |
| ·植物病毒运动蛋白的移动 | 第10-12页 |
| ·其他生物大分子的移动 | 第12-14页 |
| 第二章 运动蛋白的研究方法概况 | 第14-18页 |
| ·显微注射法 | 第14页 |
| ·基因枪轰击法 | 第14-15页 |
| ·植物病毒载体系统 | 第15-16页 |
| ·移动互补分析法 | 第16-18页 |
| 第三章 黄瓜花叶病毒的研究概况 | 第18-22页 |
| ·CMV基因组学的研究概况 | 第18-19页 |
| ·黄瓜花叶病毒MP的研究概况 | 第19页 |
| ·黄瓜花叶病毒的侵染性克隆 | 第19-22页 |
| 第四章 凤仙花坏死斑点病毒研究概况 | 第22-25页 |
| ·凤仙花坏死斑点病毒概述 | 第22页 |
| ·凤仙花坏死斑点病毒的基因组结构和功能 | 第22-23页 |
| ·凤仙花坏死斑点病毒检测方法 | 第23-24页 |
| ·基于原核表达病毒相关蛋白的田间检测方法 | 第24-25页 |
| 下篇 研究内容 | 第25-64页 |
| 第五章 农杆菌介导的黄瓜花叶病毒移动报告体系研究 | 第26-52页 |
| 摘要 | 第26-27页 |
| ABSTRACT | 第27-28页 |
| ·试验材料 | 第28-29页 |
| ·植物材料 | 第28页 |
| ·毒源 | 第28-29页 |
| ·菌株 | 第29页 |
| ·试验试剂 | 第29页 |
| ·试验器材 | 第29页 |
| ·试验方法 | 第29-41页 |
| ·载体构建 | 第29-37页 |
| ·农杆菌浸润本氏烟 | 第37-39页 |
| ·倒置荧光显微镜观察 | 第39页 |
| ·RT-PCR检测病毒 | 第39-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-50页 |
| ·黄瓜花叶病毒CMV RNA3 MP::erGFP报告载体的构建 | 第41页 |
| ·CMV RNA3 MP::erGFP报告载体最佳稀释倍数的确定 | 第41-44页 |
| ·CMV MP的M5突变体不能使CMV RNA3-MP::erGFP发生胞间移动 | 第44-45页 |
| ·CMV RNA3-MP::erGFP胞间移动互补体系的观察时间优化 | 第45-46页 |
| ·CMV RNA3-MP::erGFP胞间移动互补体系试验温度的优化 | 第46-47页 |
| ·异源病毒编码的MP可以互补CMV RNA3-MP::erGFP发生胞间移动 | 第47-48页 |
| ·CMV移动互补体系可用于异源病毒运动蛋白长距离移动的鉴定 | 第48-50页 |
| ·讨论与结论 | 第50-52页 |
| 第六章 凤仙花坏死斑点病毒核衣壳蛋白的原核表达与抗血清制备 | 第52-64页 |
| 摘要 | 第52页 |
| ABSTRACT | 第52-53页 |
| ·试验材料 | 第53-54页 |
| ·毒源与菌株 | 第53页 |
| ·植物材料 | 第53页 |
| ·质粒及菌株 | 第53页 |
| ·试验试剂 | 第53页 |
| ·试验器材 | 第53-54页 |
| ·试验方法 | 第54-58页 |
| ·载体构建 | 第54页 |
| ·原核表达 | 第54-55页 |
| ·Western Blot | 第55-56页 |
| ·免疫 | 第56-57页 |
| ·ELISA检测 | 第57页 |
| ·Dot-blot ELISA | 第57-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-61页 |
| ·获得pET28a-INSV N重组质粒阳性克隆 | 第58页 |
| ·重组融合蛋白的表达纯化、SDS-PAGE及Western-blot分析 | 第58-59页 |
| ·抗血清的制备及效价和特异性的测定 | 第59页 |
| ·Dot-blot ELISA分析 | 第59-61页 |
| ·讨论与结论 | 第61-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 本论文结论与创新点 | 第72-74页 |
| 附录 | 第74-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
