| 中文摘要 | 第1-16页 |
| Abstract | 第16-23页 |
| 第一部分 PTPRD下调对乳腺癌细胞增生、凋亡、迁移和侵袭的影响 | 第23-50页 |
| （一）前言 | 第23-26页 |
| （二）材料和方法 | 第26-37页 |
| 1. 材料 | 第26-31页 |
| ·细胞株 | 第26页 |
| ·主要实验仪器及材料 | 第26-28页 |
| ·主要实验试剂 | 第28-31页 |
| 2. 方法 | 第31-37页 |
| ·细胞培养及传代 | 第31-32页 |
| ·PTPRDsi RNA瞬转乳腺癌细胞 | 第32-33页 |
| ·CCK8增殖实验 | 第33页 |
| ·流式细胞仪检测细胞的凋亡和周期 | 第33-34页 |
| ·划痕实验 | 第34页 |
| ·Transwell迁移侵袭实验 | 第34-35页 |
| ·Western Blot | 第35-37页 |
| ·统计学处理 | 第37页 |
| （三）结果 | 第37-42页 |
| 1. PTPRD下调可以促进MDA-MB-231 细胞迁移和侵袭袭 | 第37-39页 |
| 2. PTPRD siRNA抑制细胞凋亡 | 第39-40页 |
| 3. PTPRD siRNA对增生、细胞周期的影响 | 第40-41页 |
| 4. PTPRD siRNA对上皮间质转化的影响 | 第41-42页 |
| （四）讨论 | 第42-45页 |
| （五）结论 | 第45-46页 |
| （六）参考文献 | 第46-50页 |
| 第二部分 PTPRD与乳腺癌干细胞之间的关系及小鼠成瘤实验 | 第50-78页 |
| （一）前言 | 第50-52页 |
| （二）材料和方法 | 第52-61页 |
| 1. 材料 | 第52-53页 |
| ·细胞系与实验动物 | 第52-53页 |
| ·主要实验仪器和试剂 | 第53页 |
| 2. 方法 | 第53-61页 |
| ·乳腺球培养 | 第53页 |
| ·RNA抽提 | 第53-54页 |
| ·SYBRGreen染料法qRT-PCR | 第54-55页 |
| ·细胞蛋白提取及定量 | 第55页 |
| ·Western Blot | 第55页 |
| ·免疫荧光细胞化学 | 第55-56页 |
| ·克隆形成实验 | 第56页 |
| ·流式细胞技术检测CD44~+/CD24~-细胞比例 | 第56-57页 |
| ·磁珠分选CD44~+/CD24~-细胞群 | 第57-58页 |
| ·裸鼠种植瘤模型的建立 | 第58-59页 |
| ·组织包埋、切片 | 第59页 |
| ·HE染色 | 第59-60页 |
| ·组织蛋白的提取 | 第60页 |
| ·组织RNA提取 | 第60页 |
| ·免疫组织化学法 | 第60-61页 |
| ·统计学处理 | 第61页 |
| （三）结果 | 第61-71页 |
| 1. PTPRD siRNA对CD44~+/CD24~-细胞群比例的影响 | 第61-62页 |
| 2. PTPRD siRNA对乳腺癌细胞球形成能力的影响 | 第62-63页 |
| 3. PTPRD siRNA对乳腺癌全克隆形成的影响 | 第63-65页 |
| 4. PTPRD、STAT3、P-STAT3等在乳腺癌干细胞中的表达 | 第65-66页 |
| 5. 免疫荧光法检测PTPRD在乳腺癌干细胞及非干细胞群的表达 | 第66-67页 |
| 6. PTPRD下调对癌干细胞标记分子ALDH1及OCT-4 表达的影响 | 第67-68页 |
| 7. PTPRDsiRNA对乳腺癌MDA-MB-231 细胞裸鼠种植瘤生长的抑制作用 | 第68-71页 |
| （四）讨论 | 第71-74页 |
| （五）结论 | 第74-75页 |
| （六）参考文献 | 第75-78页 |
| 第三部分 PTPRD作用的分子机制的探讨 | 第78-91页 |
| （一）前言 | 第78-79页 |
| （二）材料和方法 | 第79-81页 |
| 1. 材料 | 第79-80页 |
| 2. 方法 | 第80-81页 |
| ·IL-6 作用于细胞 | 第80页 |
| ·qRT-PCR | 第80页 |
| ·Western Blot | 第80页 |
| ·流式细胞仪检测细胞的凋亡 | 第80页 |
| ·划痕实验 | 第80-81页 |
| ·CCK-8 实验 | 第81页 |
| ·统计学处理 | 第81页 |
| （三）结果 | 第81-85页 |
| 1. IL-6 可以促进细胞迁移，抑制凋亡 | 第81-82页 |
| 2. IL-6 作用过程中PTPRD、P-STAT3，EMT相关蛋白及乳腺癌干细胞标记分子水平的变化 | 第82-84页 |
| 3. PTPRD si RNA对STAT3表达和活化的影响 | 第84-85页 |
| （四）讨论 | 第85-88页 |
| （五）结论 | 第88-89页 |
| （六）参考文献 | 第89-91页 |
| 第四部分 PTPRD、P-STAT3在乳腺癌组织中的表达与临床病理特点和预后的关系 | 第91-105页 |
| （一）前言 | 第91-92页 |
| （二）材料和方法 | 第92-94页 |
| 1. 材料 | 第92页 |
| 2. 方法 | 第92-94页 |
| ·乳腺癌组织收集、临床病理参数收集及组织芯片的制作 | 第92页 |
| ·免疫组织化学法 | 第92-93页 |
| ·免疫组织化学结果判定 | 第93页 |
| ·临床病理资料收集及预后随访 | 第93页 |
| ·统计学处理 | 第93-94页 |
| （三）结果 | 第94-100页 |
| 1. PTPRD、P-STAT3在乳腺癌及乳腺组织中的表达 | 第94-95页 |
| 2. PTPRD、P-STAT3的表达与临床病理参数之间的关系 | 第95-97页 |
| 3. PTPRD、P-STAT3的表达与预后之间的关系 | 第97-100页 |
| （四）讨论 | 第100-102页 |
| （五）结论 | 第102-103页 |
| （六）参考文献 | 第103-105页 |
| 综述 | 第105-119页 |
| 参考文献 | 第114-119页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
