中文摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-18页 |
综述 1 周围神经损伤的自体移植 | 第18-26页 |
1 概述 | 第18-19页 |
2 神经移植 | 第19-20页 |
3 神经移植物的来源 | 第20-24页 |
4 吻合血管的神经移植 | 第24页 |
5 神经导管 | 第24页 |
6 肌肉移植物 | 第24-25页 |
7 结论 | 第25-26页 |
综述 2 静电纺丝生物材料在神经细胞三维立体培养中的应用进展 | 第26-38页 |
1 概述 | 第26-28页 |
2 静电纺丝的制作过程 | 第28-29页 |
3 静电纺丝材料的选择 | 第29-31页 |
·天然材料 | 第29页 |
·合成材料 | 第29-30页 |
·生物合成材料 | 第30-31页 |
4 静电纺丝作为生物支架,进行神经细胞的体外实验 | 第31-34页 |
·对神经细胞和轴突的影响 | 第31-32页 |
·对雪旺细胞的影响 | 第32-33页 |
·对干细胞的影响 | 第33-34页 |
·静电纺丝作为神经因子释放载体,对神经再生的影响 | 第34页 |
5 静电纺丝作为生物支架,进行神经细胞的体内实验 | 第34-36页 |
6 研究中存在的问题及研究的前景展望 | 第36-38页 |
实验 1 肉毒毒素注射治疗拇爪形趾综合征的准确区域精细解剖定位及肌肉所属神经构筑学研究 | 第38-52页 |
1 材料与方法 | 第39-43页 |
·解剖方法及神经入肌点数据测量 | 第39-42页 |
·神经构筑学测量 | 第42-43页 |
2 结果 | 第43-48页 |
·神经入肌点的测量 | 第43-48页 |
·神经构筑学的测量 | 第48页 |
3 讨论 | 第48-52页 |
实验 2 三维神经元-胶质细胞共培养模型研究 | 第52-80页 |
1 材料 | 第54-58页 |
·主要的实验仪器 | 第54-55页 |
·实验试剂的配置及有效成分 | 第55-57页 |
·实验动物及细胞株简介 | 第57-58页 |
2 方法 | 第58-64页 |
·应用静电纺丝制作聚己内酯超细纤维 | 第58-59页 |
·扫描电镜下分类 PCL 超细纤维 | 第59页 |
·制备 PCL 超细纤维用于神经元、雪旺细胞和背根神经节细胞的培养 | 第59页 |
·用于神经元和原代雪旺细胞培养的 PCL 薄膜的制备 | 第59页 |
·NG108-15 神经元的培养 | 第59-60页 |
·原代雪旺细胞的分离与培养 | 第60-61页 |
·NG108-15 神经细胞和雪旺细胞的共培养 | 第61-62页 |
·背根神经节的分离 | 第62页 |
·免疫标记的神经元细胞、雪旺细胞、共同培养细胞和背根神经节 | 第62-63页 |
·神经细胞和雪旺细胞的成活率 | 第63页 |
·神经轴突生长评估 | 第63-64页 |
·原代雪旺细胞形态评估 | 第64页 |
·统计分析 | 第64页 |
3 结果 | 第64-77页 |
·有序 PCL 超细纤维的物理性质 | 第64-67页 |
·纤维直径与神经元细胞分化、生长能力的关系 | 第67-71页 |
·纤维直径和原代雪旺细胞的显性细胞表观的关系 | 第71-73页 |
·纤维直径与 NG108-15 神经元细胞/原代雪旺细胞共培养模型的关系 | 第73-75页 |
·DRG 轴突生长与雪旺细胞在 PCL 纤维上的迁移 | 第75-77页 |
4 讨论 | 第77-80页 |
结论 | 第80-81页 |
研究前景与展望 | 第81-83页 |
参考文献 | 第83-96页 |
攻读博士学位期间发表的文章或参加的科研项目 | 第96-97页 |
致谢 | 第97页 |