| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一篇 文献综述 | 第12-19页 |
| ·狂犬病病毒致病机制的研究进展 | 第12-15页 |
| ·细胞骨架及其在 RABV 感染后的变化 | 第15-19页 |
| 第二篇 研究内容 | 第19-61页 |
| 第1章 四株狂犬病病毒糖蛋白序列分析 | 第19-26页 |
| 1 材料与方法 | 第19-21页 |
| ·材料 | 第19-20页 |
| ·方法 | 第20-21页 |
| 2 结果 | 第21-24页 |
| ·RABV 糖蛋白基因的 RT－PCR 扩增及序列测定 | 第21-22页 |
| ·糖蛋白基因推导的氨基酸序列比较 | 第22页 |
| ·与常用疫苗株糖蛋白信号肽区氨基酸的比较 | 第22-23页 |
| ·糖蛋白信号肽区二级结构预测及疏水值 | 第23-24页 |
| 3 讨论 | 第24-25页 |
| 4 小结 | 第25-26页 |
| 第2章 街毒株感染鼠脑不同脑区 G 基因表达量及抗原分布 | 第26-35页 |
| 1 材料和方法 | 第26-30页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·方法 | 第27-30页 |
| 2 结果 | 第30-33页 |
| ·不同鼠脑区 RNA 浓度的测定 | 第30-31页 |
| ·街毒株感染鼠不同脑同区糖蛋白 G 基因拷贝数及抗原分布 | 第31-33页 |
| 3 讨论 | 第33-34页 |
| 4 小结 | 第34-35页 |
| 第3章 神经细胞骨架及递质相关异常基因的筛选和验证 | 第35-54页 |
| 1 材料和方法 | 第35-43页 |
| ·材料 | 第35-36页 |
| ·方法 | 第36-43页 |
| ·狂犬病病毒街毒株接种鼠脑 | 第36页 |
| ·原代神经元培养 | 第36-38页 |
| ·小鼠原代神经元感染狂犬病病毒 | 第38-39页 |
| ·海马组织和神经元细胞 RNA 的提取 | 第39页 |
| ·海马组织 RNA 逆转录反应 | 第39页 |
| ·基因的挑选和引物的设计 | 第39-41页 |
| ·采用 PCR 方法验证设计的引物 | 第41-42页 |
| ·挑选基因的 Real-Time PCR 扩增 | 第42页 |
| ·于冰上配置 Real Time PCR 混合液 | 第42页 |
| ·挑选基因的相对定量 | 第42页 |
| ·透射电镜样子处理 | 第42-43页 |
| 2 结果 | 第43-51页 |
| ·小鼠海马提取的 RNA 及神经元提取 RNA 浓度测定 | 第43-45页 |
| ·挑选基因引物的验证 | 第45-47页 |
| ·原代神经元细胞培养、鉴定及狂犬病病毒街毒株 PB3 感染 | 第47-48页 |
| ·PB3 感染海马组织及海马神经元的超微结构研究 | 第48-49页 |
| ·体内、体外变化趋势一致的差异基因的筛选 | 第49-51页 |
| 3 讨论 | 第51-52页 |
| 4 小结 | 第52-54页 |
| 第4章 细胞骨架及递质异常相关的 MYLK (肌球蛋白轻链激酶)和GELSOLIN 蛋白(凝溶胶蛋白)验证 | 第54-61页 |
| 1 材料和方法 | 第54-58页 |
| ·材料 | 第54-55页 |
| ·方法 | 第55-58页 |
| 2 结果 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-60页 |
| 4 小结 | 第60-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-71页 |
| 导师简介 | 第71-72页 |
| 作者简介 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
