| 摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-19页 |
| 实验材料 | 第19-25页 |
| 1 建立荷瘤小鼠模型的相关实验材料 | 第19页 |
| 2 RT-PCR的相关实验材料 | 第19-20页 |
| 3 rMIF蛋白提取及纯化的实验材料 | 第20-21页 |
| 4 蛋白电泳及Western-Blotting相关实验材料 | 第21-23页 |
| 5 ~(131)I标记rMIF制备相关实验材料 | 第23页 |
| 6 标记物生物学活性鉴定的实验材料 | 第23页 |
| 7 ~(131)I标记rMIF细胞摄取实验材料 | 第23页 |
| 8 ~(131)I-rMIF在荷瘤模型小鼠体内的生物学分布相关实验材料 | 第23-24页 |
| 9 磷屏放射自显影实验材料 | 第24-25页 |
| 实验方法 | 第25-31页 |
| 1 小鼠荷瘤模型的建立 | 第25页 |
| 2 MIF在荷瘤小鼠模型中的表达 | 第25-26页 |
| 3 重组MIF蛋白的诱导表达、纯化与鉴定 | 第26-28页 |
| 4 ~(131)I-rMIF的制备 | 第28-29页 |
| 5 ~(131)I-rMIF生物学活性测定 | 第29-30页 |
| 6 ~(131)I-rMIF的细胞摄取实验 | 第30页 |
| 7 ~(131)I-rMIF在荷瘤模型小鼠体内的生物学分布 | 第30页 |
| 8 ~(131)I-rMIF在荷瘤模型小鼠磷屏放射自显影 | 第30页 |
| 9 统计学处理 | 第30-31页 |
| 实验结果 | 第31-39页 |
| 1 成功制备肝癌荷瘤小鼠模型 | 第31页 |
| 2 肝癌细胞及种植瘤MIF mRNA的表达状况 | 第31-32页 |
| 3 小鼠重组MIF蛋白的诱导表达、纯化及生物学活性鉴定 | 第32-33页 |
| 4 ~(131)I-rMIF标记率、放化纯及稳定性 | 第33-34页 |
| 5 ~(131)I-rMIF的细胞摄取 | 第34-35页 |
| 6 ~(131)I-rMIF在荷瘤模型小鼠体内的生物学分布 | 第35-36页 |
| 7 荷瘤小鼠模型T/NT比值 | 第36-37页 |
| 8 磷屏放射自显影结果 | 第37-39页 |
| 讨论 | 第39-43页 |
| 全文小结 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 攻读研究生期间发表的学术论文 | 第50-51页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第51页 |
