| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 缩写词 | 第8-9页 |
| 第一章 研究背景 | 第9-29页 |
| 1.叶绿体结构 | 第9-14页 |
| ·类囊体膜上的蛋白复合体 | 第11页 |
| ·PSII的结构与功能 | 第11-14页 |
| 2.非生物胁迫对植物光合作用的影响 | 第14-20页 |
| ·干旱胁迫 | 第14-16页 |
| ·盐胁迫 | 第16-17页 |
| ·光胁迫 | 第17-18页 |
| ·低温胁迫 | 第18-19页 |
| ·热胁迫 | 第19页 |
| ·氧化胁迫 | 第19-20页 |
| 3.PSII的修复循环 | 第20页 |
| 4.蛋白酶的种类与分布 | 第20-28页 |
| ·参与蛋白质降解的蛋白酶研究 | 第21-25页 |
| ·叶绿体基质Clp蛋白酶 | 第21-22页 |
| ·膜结合的FtsH蛋白酶 | 第22-24页 |
| ·周质DegP蛋白酶 | 第24-25页 |
| ·拟南芥中的DEG蛋白酶 | 第25-27页 |
| ·类囊体膜腔侧的DEG蛋白酶 | 第25-27页 |
| ·基质侧的DEG蛋白酶 | 第27页 |
| ·其它类型的蛋白酶 | 第27-28页 |
| ·蛋白酶参与PSII的修复循环 | 第28页 |
| 5.研究目的和意义 | 第28-29页 |
| 第二章 拟南芥DEG蛋白酶的胁迫响应机理研究 | 第29-49页 |
| 一 材料与方法 | 第30-37页 |
| 1.突变体的筛选 | 第30-31页 |
| 2.核酸的提取和分析 | 第31-32页 |
| ·总RNA的提取 | 第31-32页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第32页 |
| 3.拟南芥光合作用生理生化测定 | 第32-36页 |
| ·叶绿素含量测定 | 第33页 |
| ·叶绿素荧光测定 | 第33页 |
| ·类囊体膜提取 | 第33-34页 |
| ·SDS-PAGE电泳和免疫印迹 | 第34页 |
| ·蓝绿温和凝胶电泳 | 第34-36页 |
| 4.胁迫处理 | 第36-37页 |
| ·冷胁迫处理 | 第36页 |
| ·盐胁迫处理 | 第36页 |
| ·氧化胁迫处理 | 第36页 |
| ·渗透胁迫处理 | 第36页 |
| ·干旱胁迫处理 | 第36-37页 |
| 二 结果与讨论 | 第37-49页 |
| 1 结果 | 第37-47页 |
| ·拟南芥野生型和突变体生理生化基础水平 | 第37-39页 |
| ·PSII主要蛋白的稳态水平比较 | 第37-38页 |
| ·DEG5和DEG8的组织定位 | 第38-39页 |
| ·野生型,deg5,deg8单突变体和degp5/degp8双突变体的基础色素 | 第39页 |
| ·胁迫处理过程中生理生化变化 | 第39-47页 |
| ·低温胁迫期间拟南芥叶片最大光化学效率及D1蛋白含量变化 | 第39-41页 |
| ·干旱胁迫期间拟南芥叶片最大光化学效率及D1蛋白含量变化 | 第41-42页 |
| ·盐胁迫期间拟南芥叶片最大光化学效率及D1蛋白含量变化 | 第42-44页 |
| ·渗透胁迫期间拟南芥叶片最大光化学效率及D1蛋白含量变化 | 第44-45页 |
| ·氧化胁迫期间拟南芥叶片最大光化学效率及D1蛋白含量变化 | 第45-47页 |
| 2 讨论 | 第47-49页 |
| ·DEG5和DEG8蛋白酶在胁迫处理中的变化 | 第47页 |
| ·胁迫处理中Fv/Fm以及D1蛋白变化分析 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
