中文摘要 | 第1-3页 |
ABSTRACT | 第3-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-36页 |
·前言 | 第10-11页 |
·吡哆醇的性质、来源、生理活性和用途 | 第11-12页 |
·吡哆醇的性质和来源 | 第11页 |
·吡哆醇的生理活性和用途 | 第11-12页 |
·脂肪酶的来源、用途、结构与性质 | 第12-17页 |
·脂肪酶的来源与用途 | 第12-13页 |
·脂肪酶的结构特征和催化机制 | 第13-17页 |
·脂肪酶的酶学性质 | 第17页 |
·脂肪酶的最适pH 值和最适温度 | 第17页 |
·脂肪酶活性的影响因子 | 第17页 |
·非水介质中脂肪酶催化研究进展 | 第17-29页 |
·非水介质酶学的发展概况 | 第17-19页 |
·酶催化反应体系 | 第18-19页 |
·酶催化反应的应用 | 第19页 |
·反胶团及其在酶催化反应中的应用 | 第19-23页 |
·反胶团概况 | 第19-21页 |
·反胶团作为有机相酶催化体系及其优点 | 第21-22页 |
·反胶团体系酶活性及稳定性 | 第22-23页 |
·非水介质中脂肪酶的结构 | 第23-24页 |
·非水介质中的酶学性质 | 第24-27页 |
·热力学稳定性 | 第24-25页 |
·底物的选择性 | 第25页 |
·区域或位置选择性 | 第25-26页 |
·立体选择性 | 第26页 |
·影响酶选择性的因素 | 第26-27页 |
·非水介质酶催化的影响因素 | 第27-29页 |
·水的影响 | 第27-28页 |
·介质的影响 | 第28-29页 |
·海藻糖及其对生物活性物质的保护 | 第29-31页 |
·海藻糖的存在 | 第29页 |
·海藻糖的结构与性质 | 第29-30页 |
·海藻糖独特的生物学功能 | 第30-31页 |
·海藻糖对生物体的保护 | 第30-31页 |
·海藻糖对生物分子的保护 | 第31页 |
·海藻糖保护生物分子的机理 | 第31-33页 |
·“水替代”假说 | 第31-32页 |
·“玻璃态”假说 | 第32页 |
·“优先排阻”假说 | 第32-33页 |
·本文工作目的与内容 | 第33-36页 |
第二章 吡哆醇区域选择性酯化反应酶和介质的筛选 | 第36-56页 |
·引言 | 第36-38页 |
·材料与方法 | 第38-42页 |
·实验试剂与设备 | 第38-40页 |
·磁性纳米固定化酶的制备 | 第40页 |
·反胶团溶液的制备 | 第40页 |
·离子液体[bmim]PF_6 的制备 | 第40-41页 |
·吡哆醇的酯化反应 | 第41页 |
·分析方法 | 第41-42页 |
·结果与讨论 | 第42-54页 |
·反应产物的确定 | 第42-45页 |
·脂肪酶的筛选 | 第45-46页 |
·反应介质的选择 | 第46-52页 |
·离子液[BMIM]PF_6 中吡哆醇的酯化 | 第47-50页 |
·反胶团和乙腈中吡哆醇的酯化 | 第50-52页 |
·乙腈中酰基供体对反应的影响 | 第52-54页 |
·本章小结 | 第54-56页 |
第三章 酶催化合成5-AcPN 反应条件的考察 | 第56-68页 |
·引言 | 第56页 |
·材料与方法 | 第56-58页 |
·实验试剂与设备 | 第56页 |
·含水率 W_0 的控制 | 第56-57页 |
·水活度a_w 的控制 | 第57页 |
·反胶团含水率 W_0 的测定 | 第57-58页 |
·结果与讨论 | 第58-67页 |
·含水量的影响 | 第58-60页 |
·反胶团中含水率W_0 的影响 | 第58-59页 |
·乙腈中初始水活度a_w 的影响 | 第59-60页 |
·反应温度的影响 | 第60-62页 |
·反胶团中反应温度的影响 | 第60-61页 |
·乙腈中反应温度的影响 | 第61-62页 |
·底物摩尔比的影响 | 第62-64页 |
·反胶团中底物摩尔比的影响 | 第62-63页 |
·乙腈中底物摩尔比的影响 | 第63-64页 |
·酶载量的影响 | 第64-66页 |
·反胶团中酶载量的影响 | 第64-65页 |
·乙腈中酶载量的影响 | 第65-66页 |
·乙腈中摇床转速对反应的影响 | 第66-67页 |
·本章小结 | 第67-68页 |
第四章 响应面法优化酶催化5-AcPN 的合成 | 第68-82页 |
·引言 | 第68-69页 |
·材料与方法 | 第69页 |
·实验试剂与设备 | 第69页 |
·实验方法 | 第69页 |
·响应面法实验设计 | 第69-70页 |
·统计分析 | 第70-72页 |
·模型的验证 | 第72页 |
·RSM 模型的拟合 | 第72-73页 |
·RSM 模型的ANOVA 分析及精确性检验 | 第73-75页 |
·RSM 模型的响应面分析 | 第75-79页 |
·反应的优化和模型的验证 | 第79-80页 |
·本章小结 | 第80-82页 |
第五章 CB-Span 85 反胶团中脂肪酶的活性特征 | 第82-102页 |
·引言 | 第82-83页 |
·材料与方法 | 第83-88页 |
·实验试剂与设备 | 第83-84页 |
·溶液配制方法 | 第84-85页 |
·CB 配基修饰原理 | 第85页 |
·CB-Span 85 反胶团的制备 | 第85-86页 |
·反胶团含水率 W0 的控制与测定 | 第86页 |
·含酶反胶团的制备 | 第86页 |
·反胶团粒径的测定 | 第86-87页 |
·测量原理 | 第86-87页 |
·样品的测定 | 第87页 |
·脂肪酸标准曲线的绘制 | 第87页 |
·反胶团中酶催化橄榄油水解 | 第87-88页 |
·油-水两相中酶催化橄榄油水解 | 第88页 |
·反胶团中酶催化水解动力学 | 第88页 |
·结果与讨论 | 第88-99页 |
·CB-Span 85 反胶团的特征 | 第88-91页 |
·酶活分析及浓度的影响 | 第91-92页 |
·含水率 W_0 和 CB-Span 85 浓度的影响 | 第92-94页 |
·表面活性剂 Span 85 浓度的影响 | 第94-95页 |
·CRL 在反胶团中催化橄榄油水解反应动力学 | 第95-96页 |
·pH 值的影响 | 第96-98页 |
·温度的影响 | 第98页 |
·CRL 在反胶团中的稳定性 | 第98-99页 |
·本章小结 | 第99-102页 |
第六章 海藻糖对脂肪酶的保护及酶失活动力学 | 第102-112页 |
·引言 | 第102页 |
·材料与方法 | 第102-106页 |
·实验试剂与设备 | 第102-104页 |
·考马斯亮蓝G-250 溶液的配制 | 第104页 |
·磁性纳米粒子的制备 | 第104页 |
·脂肪酶的固定化 | 第104-105页 |
·蛋白质含量的测定 | 第105页 |
·酶活的测定 | 第105-106页 |
·保护剂对酶活性的保护 | 第106页 |
·脂肪酶 CRL 透析 | 第106页 |
·结果与讨论 | 第106-111页 |
·海藻糖对MIE 活性的保护作用 | 第106-107页 |
·二糖类对MIE 活性的保护作用 | 第107-109页 |
·CRL 的热力学失活特征 | 第109页 |
·CRL 的热失活动力学 | 第109-111页 |
·模型理论 | 第109-110页 |
·模型拟合结果 | 第110-111页 |
·本章小结 | 第111-112页 |
第七章 总结与展望 | 第112-116页 |
·全文总结 | 第112-113页 |
·创新点 | 第113-114页 |
·工作展望 | 第114-116页 |
参考文献 | 第116-132页 |
发表的论文和科研情况说明 | 第132-133页 |
附录 | 第133-134页 |
致谢 | 第134页 |