| 缩写表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| Ⅰ 引言 | 第9-12页 |
| Ⅱ 材料与方法 | 第12-16页 |
| 一、植物材料 | 第12页 |
| 二、处理方法 | 第12页 |
| 三、测定方法 | 第12-15页 |
| 1、CaM的提取 | 第12-13页 |
| 2、CaM的测定 | 第13页 |
| 3、无机磷的测定 | 第13页 |
| 4、蛋白质的测定 | 第13页 |
| 5、超氧化物歧化酶的提取 | 第13-14页 |
| 6、超氧化物歧化酶总活性测定 | 第14页 |
| 7、超氧化物歧化酶三类同工酶测定 | 第14页 |
| 8、SOD的聚丙烯酰胺凝胶电泳及活性染色 | 第14-15页 |
| 9、鉴别SOD同工酶类型的染色定位法 | 第15页 |
| 四、试剂与仪器 | 第15-16页 |
| Ⅲ 实验结果 | 第16-38页 |
| 一、诱导表达细胞核CaM转基因烟草的筛选 | 第16-25页 |
| 1、Tc诱导24小时或48小时转基因烟草的检测结果 | 第16-18页 |
| 2、Tc诱导过程中转基因烟草幼苗CaM的动态变化 | 第18-21页 |
| 3、Tc诱导过程中转基因烟草离体叶圆片CaM的动态变化 | 第21-25页 |
| 二、诱导表达细胞质CaM／CaMBP对烟草SOD及其同工酶活性的影响 | 第25-38页 |
| 1、Tc诱导过程中转基因烟草离体叶圆片总SOD的活性变化 | 第25-26页 |
| 2、Tc诱导过程中转基因烟草离体叶圆片SOD同工酶的活性变化 | 第26-34页 |
| 2．1 SOD同工酶活性测定抑制剂终浓度的摸索 | 第26-29页 |
| 2．2 Tc诱导过程中转基因烟草离体叶圆片Cu、Zn-SOD的活性变化 | 第29-31页 |
| 2．3 Tc诱导24小时转基因烟草离体叶圆片Mn-SOD的活性变化 | 第31-32页 |
| 2．4 Tc诱导24小时转基因烟草叶圆片Fe-SOD的活性变化 | 第32-34页 |
| 3、转基因烟草离体叶圆片SOD电泳图谱及其同工酶类型 | 第34-38页 |
| Ⅳ 讨论 | 第38-42页 |
| 一、转基因烟草各株系间的CaM表达差异与原因分析 | 第38-39页 |
| 二、Tc诱导表达系统的表达渗漏问题 | 第39页 |
| 三、诱导表达细胞质CaM／CaMBP对烟草SOD及其同工酶的调控作用 | 第39-41页 |
| 四、利用凝胶电泳活性染色方法鉴别转基因烟草SOD同工酶 | 第41-42页 |
| Ⅴ 全文总结 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
