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人β-神经生长因子基因转染体外培养猫角膜内皮细胞促进其分裂再生的实验研究

中文摘要第1-8页
英文摘要第8-10页
实验用主要仪器和设备第10-11页
实验用主要试剂第11-12页
一、 正文第12-75页
 前言第12-14页
 第一部分 、 人β-神经生长因子重组真核表达载体(pcDNA4-β-NGF)的构建第14-27页
  目的:第14-18页
   pcDNA4-β-NGF重组质粒构建图第15-16页
   pcDNA4B质粒图谱第16-17页
   pcDNA4B质粒阅读框第17-18页
  方法和结果:第18-27页
   一、 从全血基因组中克隆人β-NGF基因第18页
   二、 以全血基因组DNA为模板,特异性扩增β-NGF基因第18-19页
   三、 PCR产物的提纯第19-20页
   四、 双酶切目的基因和质粒DNA第20页
   五、 酶切产物的纯化(同PCR产物的提纯)第20页
   六、 酶切后目的基因与载体DNA的体外连接第20-21页
   七、 感受态细胞的制备及质粒的转染(氯化钙法)第21-23页
   八、 阳性菌DNA的粗提取第23页
   九、 酶切鉴定重组质粒第23-24页
   十、 计算机自动化基因测序结果第24-26页
   十一、 pcDNA4-β-NGF重组质粒的扩增及纯化第26页
   十二、 总结性电泳第26-27页
 第二部分 、 猫角膜内皮细胞的体外培养及鉴定第27-37页
  目的:第27页
  材料和方法:第27-28页
   一. 有关试剂的配制第27页
   二. 猫角膜内皮细胞的体外培养第27-28页
   三. 体外培养猫角膜内皮细胞的鉴定:第28页
  结果:第28-37页
   1 、 形态学观察结果第28-33页
   2 、 NSE的免疫组织化学染色鉴定结果第33-35页
   3 、 透射电镜观察结果第35-37页
 第三部分 、 脂质体介导重组真核表达载体pcDNA4-β-NGF转染体外培养的猫角膜内皮细胞的研究第37-44页
  目的及原理:第37页
  方法:第37-39页
   一、 紫外分光光度仪检测质粒的纯度并调节其浓度第37页
   二、 脂质体介导外源基因转染培养的猫角膜内皮细胞第37-38页
   三、 报道基因的检测第38页
   四、 RT-PCR法基因水平检测外源基因的表达第38-39页
   五、 免疫组织化学方法蛋白水平检测外源基因的表达第39页
  结果:第39-44页
   一、 转染时细胞的形态学变化第39-40页
   二、 转染效率的检测-报道基因的表达结果第40-41页
   三、 细胞总RNA的提取结果第41页
   四、 RT-PCR结果第41-42页
   五、 蛋白水平检测β-NGF的表达-免疫组织化学结果第42-44页
 第四部分 、 人β-NGF基因转染对体外培养的猫角膜内皮细胞分裂再生的影响第44-55页
  目的:第44页
  方法:第44-46页
   一、 MTT法检测猫角膜内皮细胞增殖活性的原理及方法第44页
   二、 细胞有丝分裂指数分析方法第44-45页
   三、 流式细胞仪检测转基因前后猫角膜内皮细胞中G1细胞比例第45-46页
   四、 人β-NGF基因促进猫角膜内皮细胞定量损伤的制作及测量方法第46页
  结果:第46-55页
   一、 MTT法检测猫角膜内皮细胞增殖活性结果第46-48页
   二、 细胞有丝分裂指数分析结果第48-51页
   三、 流式细胞仪检测转基因前后猫角膜内皮细胞的细胞周期结果第51-53页
   四、 人β-NGF基因促进猫角膜内皮细胞定量损伤的愈合结果第53-55页
 第五部分 、 稳定表达人β-NGF基因的猫角膜内皮细胞的筛选第55-70页
  目的:第55页
  方法:第55页
   一、 角膜内皮细胞的G418最小致死剂量测定方法第55页
   二、 抗性细胞克隆的筛选方法第55页
   三、 人β-NGF单克隆抗体的免疫组织化学染色方法第55页
  结果:第55-61页
   一、 角膜内皮细胞G418最小致死剂量测定结果第55页
   二、 抗性细胞克隆的筛选结果第55-58页
   三、 人β-NGF单克隆抗体免疫组织化学染色结果第58-61页
  讨论:第61-70页
 参考文献第70-74页
 结论:第74-75页
二、 综述第75-82页
三、 附录第82-84页
四、 致谢第84页

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