| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-17页 |
| 1 绪论 | 第17-36页 |
| ·研究的目的及意义 | 第17页 |
| ·研究的目的 | 第17页 |
| ·研究的意义 | 第17页 |
| ·国内外研究现状 | 第17-30页 |
| ·周围神经概述 | 第17-20页 |
| ·促周围神经损伤修复支架的研究概述 | 第20页 |
| ·材料在促周围神经损伤修复支架中的应用 | 第20-27页 |
| ·促周围神经损伤修复支架应该具有的性质 | 第27页 |
| ·促周围神经损伤修复支架的外层结构 | 第27-28页 |
| ·促周围神经损伤修复支架的内部基质 | 第28-30页 |
| ·促周围神经损伤修复支架的发展方向 | 第30页 |
| ·论文设计 | 第30-34页 |
| ·论文设计的思想 | 第30-32页 |
| ·论文的研究内容 | 第32-34页 |
| ·预期结果 | 第34-36页 |
| 2 ECM 粉末的制备及其评价 | 第36-40页 |
| ·引言 | 第36页 |
| ·实验部分 | 第36-38页 |
| ·主要仪器及设备 | 第36页 |
| ·主要试剂及材料 | 第36页 |
| ·对猪皮的去细胞处理 | 第36页 |
| ·形体学观测 | 第36页 |
| ·ECM 基因组DNA 残留分析 | 第36-38页 |
| ·ECM 粉末的制备 | 第38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-39页 |
| ·ECM 的形态学观测 | 第38-39页 |
| ·ECM 基因组DNA 残留分析 | 第39页 |
| ·本章小结 | 第39-40页 |
| 3 NGF 明胶微球的制备 | 第40-50页 |
| ·引言 | 第40-42页 |
| ·实验部分 | 第42-44页 |
| ·主要仪器 | 第42页 |
| ·主要试剂 | 第42页 |
| ·空白明胶微球的制备 | 第42页 |
| ·NGF 明胶微球的制备 | 第42-43页 |
| ·微球的形态学观察及粒径分布 | 第43页 |
| ·NGF 明胶微球对NGF 封载率的测定 | 第43-44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-49页 |
| ·微球的形态及粒径分布 | 第44-47页 |
| ·NGF 明胶微球对NGF 的封载率 | 第47-49页 |
| ·本章小结 | 第49-50页 |
| 4 几种构建神经支架原料的力学性质的比较 | 第50-56页 |
| ·引言 | 第50页 |
| ·实验部分 | 第50-51页 |
| ·主要仪器及设备 | 第50页 |
| ·主要试剂及材料 | 第50页 |
| ·试件的制备 | 第50-51页 |
| ·力学测试 | 第51页 |
| ·结果及讨论 | 第51-55页 |
| ·本章小结 | 第55-56页 |
| 5 碱性氨基酸调节PLGA 体外降解特性的研究 | 第56-63页 |
| ·引言 | 第56页 |
| ·实验部分 | 第56-57页 |
| ·主要材料及设备 | 第56页 |
| ·样品的制作 | 第56-57页 |
| ·样品的体外降解实验 | 第57页 |
| ·数据处理 | 第57页 |
| ·结果与讨论 | 第57-61页 |
| ·碱性添加剂对PLGA 降解过程中pH 特性的影响 | 第57-59页 |
| ·碱性添加剂对PLGA 降解过程中质量损失特性的影响 | 第59-61页 |
| ·本章小结 | 第61-63页 |
| 6 PLGA 和ECM 的比例对支架理化性质的影响 | 第63-71页 |
| ·引言 | 第63页 |
| ·实验部分 | 第63-64页 |
| ·主要材料及设备 | 第63页 |
| ·PLGA-ECM 支架的制备 | 第63页 |
| ·PLGA-ECM 支架的力学性质评价 | 第63页 |
| ·PLGA-ECM 支架的形态学观测 | 第63页 |
| ·PLGA-ECM 支架的的体外降解行为考察 | 第63-64页 |
| ·结果与讨论 | 第64-69页 |
| ·PLGA 与ECM 的不同比例对支架力学性质的影响 | 第64-66页 |
| ·PLGA 与ECM 的不同比例对支架结构的影响 | 第66页 |
| ·PLGA 与ECM 的不同比例对支架吸水率及降解性质的影响 | 第66-69页 |
| ·本章小结 | 第69-71页 |
| 7 NGF 促周围神经损伤修复支架的制备及其理化性质检测 | 第71-77页 |
| ·引言 | 第71页 |
| ·实验部分 | 第71-72页 |
| ·主要仪器及设备 | 第71页 |
| ·主要试剂及材料 | 第71页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架的制备 | 第71页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架的力学测试 | 第71-72页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架的形态学观测 | 第72页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架的体外降解及对NGF 的释放速率检测 | 第72页 |
| ·结果与讨论 | 第72-76页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架的形态学观测 | 第72-73页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架的力学性质 | 第73-74页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架的降解性质 | 第74-75页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架对NGF 的缓释性质 | 第75-76页 |
| ·本章小结 | 第76-77页 |
| 8 NGF 促周围神经损伤修复支架的生物安全性评价 | 第77-85页 |
| ·引言 | 第77页 |
| ·实验部分 | 第77-81页 |
| ·主要材料及设备 | 第77页 |
| ·供试液的制备 | 第77页 |
| ·过敏性试验 | 第77-78页 |
| ·动物急性（单剂量）毒性 | 第78页 |
| ·皮肤致敏试验 | 第78-79页 |
| ·皮内刺激试验 | 第79页 |
| ·热源试验 | 第79页 |
| ·溶血试验 | 第79-80页 |
| ·短期肌肉植入试验 | 第80-81页 |
| ·结果与讨论 | 第81-84页 |
| ·过敏性试验 | 第81页 |
| ·动物急性（单剂量）毒性 | 第81-82页 |
| ·皮肤致敏试验 | 第82-83页 |
| ·皮内刺激试验 | 第83页 |
| ·热源试验 | 第83页 |
| ·溶血试验 | 第83-84页 |
| ·短期肌肉植入试验 | 第84页 |
| ·本章小结 | 第84-85页 |
| 9 NGF 促周围神经损伤修复支架与雪旺氏细胞的共培养 | 第85-89页 |
| ·引言 | 第85页 |
| ·实验部分 | 第85-86页 |
| ·主要仪器及设备 | 第85页 |
| ·主要试剂及材料 | 第85页 |
| ·雪旺氏细胞的原代培养及鉴定 | 第85-86页 |
| ·雪旺氏细胞在NGF 促周围神经损伤修复支架上的黏附 | 第86页 |
| ·NGF 促周围神经损伤修复支架对雪旺氏细胞增殖的影响（MTT） | 第86页 |
| ·结果与讨论 | 第86-88页 |
| ·雪旺氏细胞的原代培养及鉴定 | 第86-87页 |
| ·MTT 实验结果 | 第87-88页 |
| ·雪旺氏细胞在NGF 促周围神经损伤修复支架上的黏附 | 第88页 |
| ·本章小结 | 第88-89页 |
| 10 动物实验 | 第89-92页 |
| ·引言 | 第89页 |
| ·实验部分 | 第89-90页 |
| ·主要材料及设备 | 第89页 |
| ·动物模型的建立 | 第89-90页 |
| ·结果与讨论 | 第90页 |
| ·本章小结 | 第90-92页 |
| 11 全文结论 | 第92-93页 |
| ·主要结论 | 第92页 |
| ·后续工作建议 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-113页 |
| 附录 | 第113-117页 |
| A. 作者在攻读博士学位期间发表论文情况 | 第113-114页 |
| B. 参加科研项目情况 | 第114-115页 |
| C. 实验动物使用许可证明 | 第115-117页 |
