中文摘要 | 第17-22页 |
ABSTRACT | 第22-27页 |
第一章 综述 | 第28-42页 |
1 镉的理化性质 | 第28页 |
2 镉的来源及污染现状 | 第28-29页 |
2.1 镉的来源 | 第28-29页 |
2.2 镉的污染现状 | 第29页 |
3 镉对水生动物的毒性研究 | 第29-31页 |
3.1 镉的吸收和积累 | 第29页 |
3.2 镉的毒性 | 第29-31页 |
3.2.1 镉对机体组织形态学的影响 | 第29-30页 |
3.2.2 镉对机体的氧化损伤效应 | 第30页 |
3.2.3 镉对机体抗氧化系统的影响 | 第30-31页 |
3.2.4 镉对机体分子水平上的影响 | 第31页 |
4 甲壳动物免疫学研究进展 | 第31-35页 |
4.1 物理屏障 | 第32页 |
4.2 细胞免疫 | 第32-33页 |
4.2.1 血细胞分类和形态 | 第32页 |
4.2.2 血细胞的功能 | 第32-33页 |
4.3 体液免疫 | 第33-35页 |
4.3.1 水解酶类 | 第33页 |
4.3.2 抗氧化酶 | 第33页 |
4.3.3 模式识别受体 | 第33-34页 |
4.3.4 抗菌肽 | 第34页 |
4.3.5 酚氧化酶原激活系统 | 第34-35页 |
5 免疫增强剂脂多糖的研究进展 | 第35-37页 |
5.1 脂多糖的性质 | 第36页 |
5.2 脂多糖的功能与应用 | 第36-37页 |
6 本学位论文的研究内容和研究意义 | 第37-42页 |
第二章 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞超微结构的影响 | 第42-54页 |
1 材料与方法 | 第43-44页 |
1.1 实验材料 | 第43页 |
1.2 实验方法 | 第43-44页 |
1.2.1 实验设计 | 第43页 |
1.2.2 电镜样品制备 | 第43-44页 |
2 结果 | 第44-50页 |
2.1 河南华溪蟹血淋巴细胞的超微结构 | 第44-45页 |
2.2 镉暴露 7 d对河南华溪蟹血淋巴细胞超微结构的影响 | 第45-48页 |
2.3 镉暴露 21 d对河南华溪蟹血淋巴细胞超微结构的影响 | 第48-50页 |
3 讨论 | 第50-52页 |
3.1 河南华溪蟹血淋巴细胞类型及功能 | 第50-51页 |
3.2 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞超微结构的影响 | 第51-52页 |
4 小结 | 第52-54页 |
第三章 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞免疫相关因子的影响及脂多糖的调节作用27 | 第54-70页 |
1 材料与方法 | 第56-58页 |
1.1 实验材料 | 第56页 |
1.1.1 材料 | 第56页 |
1.1.2 主要试剂 | 第56页 |
1.1.3 主要仪器 | 第56页 |
1.2 实验方法 | 第56-58页 |
1.2.1 实验设计 | 第56-57页 |
1.2.2 血液采集和血细胞样品制备 | 第57页 |
1.2.3 镉的富集量 | 第57页 |
1.2.4 血淋巴细胞总数 | 第57页 |
1.2.5 活性氧自由基(ROS)水平 | 第57页 |
1.2.6 溶酶体膜的稳定性 | 第57-58页 |
1.2.7 溶酶体酶 | 第58页 |
1.2.8 蛋白质含量 | 第58页 |
1.3 数据处理与统计 | 第58页 |
2 结果 | 第58-64页 |
2.1 镉在河南华溪蟹血淋巴细胞中的富集量 | 第58-59页 |
2.2 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞总数的影响及脂多糖的调节作用 | 第59-60页 |
2.3 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞中ROS水平的影响及脂多糖的调节作用 | 第60-61页 |
2.4 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞溶酶体膜的稳定性的影响及脂多糖的调节作用 | 第61-62页 |
2.5 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞溶酶体酶活性的影响及脂多糖的调节作用 | 第62-64页 |
3 讨论 | 第64-67页 |
3.0 镉在河南华溪蟹血淋巴细胞中的富集 | 第64页 |
3.1 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞总数的影响及脂多糖的调节作用 | 第64-65页 |
3.2 镉诱导河南华溪蟹血淋巴细胞ROS水平变化及脂多糖的调节作用 | 第65-66页 |
3.3 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞溶酶体膜稳定性的影响及脂多糖的调节作用 | 第66页 |
3.4 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞溶酶体酶活性的影响及脂多糖的调节作用 | 第66-67页 |
4 小结 | 第67-70页 |
第四章 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞抗氧化物酶和氧化损伤的影响及脂多糖的调节作用 | 第70-86页 |
1 材料与方法 | 第72-74页 |
1.1 实验材料 | 第72页 |
1.1.1 动物材料 | 第72页 |
1.1.2 主要试剂 | 第72页 |
1.1.3 主要仪器 | 第72页 |
1.2 实验方法 | 第72-74页 |
1.2.1 实验设计 | 第72页 |
1.2.2 样品制备 | 第72页 |
1.2.3 抗氧化酶活性的测定 | 第72-73页 |
1.2.4 PCO含量的测定 | 第73页 |
1.2.5 DPC水平的测定 | 第73-74页 |
1.2.6 MDA含量的测定 | 第74页 |
1.2.7 蛋白质含量的测定 | 第74页 |
1.3 数据统计与处理 | 第74页 |
2 结果 | 第74-80页 |
2.1 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞T-AOC的影响及脂多糖的调节作用 | 第74-75页 |
2.2 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞抗氧化酶活性的影响及脂多糖的调节作用 | 第75-78页 |
2.3 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞PCO含量的影响及脂多糖的调节作用 | 第78-79页 |
2.4 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞DPC的影响及脂多糖的调节作用 | 第79-80页 |
2.5 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞MDA含量的影响及脂多糖的调节作用 | 第80页 |
3 讨论 | 第80-83页 |
3.1 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞抗氧化酶活性的影响 | 第81-82页 |
3.2 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞的氧化损伤效应 | 第82-83页 |
3.3 脂多糖对镉引起河南华溪蟹血淋巴细胞抗氧化酶活性变化和氧化损伤效应的调节作用 | 第83页 |
4 小结 | 第83-86页 |
第五章 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞免疫相关基因表达水平的影响及脂多糖的调节作用 | 第86-100页 |
1 材料与方法 | 第88-91页 |
1.1 实验材料 | 第88页 |
1.1.1 动物材料 | 第88页 |
1.1.2 主要试剂 | 第88页 |
1.1.3 主要仪器 | 第88页 |
1.2 实验方法 | 第88-91页 |
1.2.1 实验设计 | 第88页 |
1.2.2 样品制备 | 第88-89页 |
1.2.3 提取总RNA | 第89页 |
1.2.4 反转录获得cDNA第一链 | 第89-90页 |
1.2.5 实时荧光定量PCR(Real-time PCR)检测proPO,LSZ和MT mRNA表达水平的变化 | 第90-91页 |
1.2.6 PO活性的测定 | 第91页 |
1.3 数据处理与统计 | 第91页 |
2 结果 | 第91-96页 |
2.1 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞proPO m RNA表达水平的影响及脂多糖的调节作用 | 第91-93页 |
2.2 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞PO活性的影响及脂多糖的调节作用 | 第93-94页 |
2.3 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞LSZ mRNA表达水平的影响及脂多糖的调节作用 | 第94-95页 |
2.4 镉对河南华溪蟹血淋巴细胞MT mRNA表达水平的影响及脂多糖的调节作用 | 第95-96页 |
3 讨论 | 第96-98页 |
3.1 镉对河南华溪蟹酚氧化酶原激活系统的影响及脂多糖的调节作用 | 第96-97页 |
3.2 镉对河南华溪蟹LSZ基因表达水平的影响及脂多糖的调节作用 | 第97页 |
3.3 镉对河南华溪蟹MT基因表达水平的影响及脂多糖的调节作用 | 第97-98页 |
4 小结 | 第98-100页 |
全文结论和创新点 | 第100-102页 |
参考文献 | 第102-122页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第122-124页 |
致谢 | 第124-125页 |
个人简介及联系方式 | 第125页 |