| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-13页 |
| 0 引言 | 第13-14页 |
| 1 材料与方法 | 第14-19页 |
| ·实验材料 | 第14-15页 |
| ·主要试剂 | 第14-15页 |
| ·主要仪器 | 第15页 |
| ·实验方法 | 第15-19页 |
| ·LC的制备 | 第15-16页 |
| ·动物模型制作与PM的收集 | 第16页 |
| ·吞噬功能测定 | 第16-17页 |
| ·NO的诱生及测定 | 第17页 |
| ·H_2O_2的测定 | 第17页 |
| ·O_2~(?)的测定 | 第17页 |
| ·MTT比色法 | 第17-18页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋 | 第18-19页 |
| ·DNA琼脂糖凝胶电泳 | 第19页 |
| ·统计学处理 | 第19页 |
| 2 结果 | 第19-28页 |
| ·脂质体形态、大小及脂质体中clndronate包裹率 | 第19-20页 |
| ·大鼠SAP模型的制备 | 第20-21页 |
| ·PM的形态学观察 | 第21-22页 |
| ·LC对大鼠PM吞噬功能的影响 | 第22-23页 |
| ·LC对大鼠PMNO、H_2O_2和O_2~(?)生成的影响 | 第23-25页 |
| ·LC对SAP大鼠PM生长的作用 | 第25-26页 |
| ·流式细胞术检测SAP大鼠PM细胞的凋亡情况 | 第26-27页 |
| ·DNA琼脂糖凝胶电泳观察PM的凋亡 | 第27-28页 |
| 3 讨论 | 第28-36页 |
| ·SAP模型的制备 | 第29-30页 |
| ·中性红比色法检测PM吞噬功能的机制 | 第30-31页 |
| ·SAP时PM的氧化应激功能的改变及其意义 | 第31页 |
| ·PM凋亡在SAP中的意义 | 第31-36页 |
| 4 参考文献 | 第36-42页 |
| 本文小结 | 第42-43页 |
| 综述 | 第43-53页 |
| 在学期间发表的论文目录 | 第53-55页 |
| 致谢 | 第55页 |