| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-20页 |
| ·自身免疫性疾病 | 第11-13页 |
| ·常见自身免疫性疾病 | 第11-12页 |
| ·自身免疫性疾病发病机制 | 第12页 |
| ·自身免疫性疾病治疗 | 第12-13页 |
| ·免疫抑制药物研究进展 | 第13-15页 |
| ·激素类免疫抑制剂 | 第13页 |
| ·DNA或RNA合成抑制剂 | 第13-14页 |
| ·细胞因子合成抑制剂 | 第14页 |
| ·细胞因子作用抑制剂 | 第14页 |
| ·生物免疫抑制剂 | 第14页 |
| ·天然产物提取物免疫抑制剂 | 第14-15页 |
| ·酸浆属植物化学成分及其药理活性研究进展 | 第15-17页 |
| ·酸浆属植物化学成分研究进展 | 第17页 |
| ·酸浆属植物药理作用研究进展 | 第17页 |
| ·研究目标内容创新点和意义 | 第17-20页 |
| ·研究目标 | 第17-18页 |
| ·研究内容 | 第18-19页 |
| ·创新点 | 第19页 |
| ·研究意义 | 第19-20页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第20-28页 |
| ·实验材料 | 第20-24页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| ·实验药品 | 第20页 |
| ·常用试剂 | 第20-21页 |
| ·仪器与设备 | 第21-22页 |
| ·生化试剂配制 | 第22-24页 |
| ·常用实验方法 | 第24-28页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞的分离及培养 | 第24-25页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第25页 |
| ·Western blotting | 第25-26页 |
| ·细胞RNA的抽提 | 第26页 |
| ·RNA的反转录 | 第26-27页 |
| ·细胞蛋白的提取 | 第27-28页 |
| 第3章 酸浆属有效单体成分的筛选研究 | 第28-36页 |
| ·引言 | 第28-29页 |
| ·材料与方法 | 第29-31页 |
| ·实验动物 | 第29页 |
| ·仪器 | 第29页 |
| ·试剂 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-30页 |
| ·药物的细胞毒性检测 | 第29-30页 |
| ·药物的免疫抑制活性检测 | 第30页 |
| ·药物对MLR的作用 | 第30页 |
| ·统计学方法 | 第30-31页 |
| ·实验结果 | 第31-34页 |
| ·药物的细胞毒性 | 第31-32页 |
| ·药物抑制ConA激活的小鼠脾细胞增殖 | 第32-34页 |
| ·Physalin H抑制混合淋巴细胞反应 | 第34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 第4章 Physalin H的时效性及其对细胞周期的影响 | 第36-42页 |
| ·引言 | 第36页 |
| ·材料与方法 | 第36-37页 |
| ·实验动物 | 第36页 |
| ·仪器 | 第36页 |
| ·试剂 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37页 |
| ·Physalin H的时效型 | 第37页 |
| ·Physalin H对细胞周期的影响 | 第37页 |
| ·统计学方法 | 第37页 |
| ·实验结果 | 第37-40页 |
| ·Physalin H对细胞抑制作用的时效性 | 第37-38页 |
| ·Physalin H对细胞周期的影响 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 第5章 Physalin H对T淋巴细胞细胞亚型的影响 | 第42-46页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料与方法 | 第42-43页 |
| ·实验动物 | 第42页 |
| ·仪器 | 第42-43页 |
| ·试剂 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43页 |
| ·统计学方法 | 第43页 |
| ·实验结果 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-46页 |
| 第6章 Physalin H对Th1/Th2细胞因子平衡的影响 | 第46-51页 |
| ·引言 | 第46页 |
| ·材料与方法 | 第46-47页 |
| ·实验动物 | 第46页 |
| ·仪器 | 第46页 |
| ·试剂 | 第46-47页 |
| ·实验方法 | 第47页 |
| ·统计学方法 | 第47页 |
| ·实验结果 | 第47-50页 |
| ·Physalin H对细胞上清中Thl细胞因子IL-2和IFN-γ分泌水平的影响 | 第47-48页 |
| ·Physalin H对细胞上清中Th2细胞因子IL-4和IL-10分泌水平的影响 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| 第7章 Physalin H对T细胞中HO-1表达的影响 | 第51-59页 |
| ·引言 | 第51页 |
| ·材料与方法 | 第51-56页 |
| ·实验动物 | 第51页 |
| ·仪器 | 第51-52页 |
| ·试剂 | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-55页 |
| ·总蛋白的提取和定量 | 第52-53页 |
| ·Western印迹法测定Physalin H对蛋白HO-1表达的影响 | 第53-54页 |
| ·RT-PCR法检测Physalin H对HO-1基因的转录变化 | 第54-55页 |
| ·统计学方法 | 第55-56页 |
| ·实验结果 | 第56-58页 |
| ·Physalin H对T淋巴细胞中HO-1蛋白表达的影响 | 第56-57页 |
| ·Physalin H对T淋巴细胞中HO-1 mRNA表达的影响 | 第57-58页 |
| ·讨论 | 第58-59页 |
| 第8章 Physalin H对小鼠体内炎症的影响 | 第59-63页 |
| ·引言 | 第59页 |
| ·材料与方法 | 第59-61页 |
| ·实验动物 | 第59页 |
| ·仪器 | 第59页 |
| ·试剂 | 第59页 |
| ·实验方法 | 第59-60页 |
| ·小鼠耳廓肿胀的体内实验 | 第59-60页 |
| ·ELISA方法检测耳廓肿胀模型小鼠的血清中细胞因子IL-2、IL-6 | 第60页 |
| ·统计学方法 | 第60-61页 |
| ·实验结果 | 第61-62页 |
| ·Physalin H对小鼠耳肿胀的抑制作用 | 第61-62页 |
| ·Physalin H作用后血清中细胞因子的变化 | 第62页 |
| ·讨论 | 第62-63页 |
| 第9章 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 论文发表情况 | 第70页 |
| 专利申请情况 | 第70-71页 |
| 卷内备考表 | 第71页 |
