| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第10-17页 |
| 1.1 海洋生物污损 | 第10页 |
| 1.2 藤壶概述 | 第10-11页 |
| 1.3 藤壶胶概述 | 第11-12页 |
| 1.4 藤壶与其它海洋污损生物(贻贝类)黏附的区别 | 第12-13页 |
| 1.5 藤壶研究现状分析 | 第13-15页 |
| 1.6 选题背景及意义 | 第15-16页 |
| 1.7 课题研究内容及特色 | 第16-17页 |
| 第二章 藤壶在表面附着的调控机制的研究 | 第17-31页 |
| 2.1 试剂和仪器 | 第17-18页 |
| 2.1.1 试剂 | 第17页 |
| 2.1.2 仪器 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.2.1 藤壶样品的采集 | 第18页 |
| 2.2.2 藤壶底壳中的水溶性有机组份的提取 | 第18页 |
| 2.2.3 藤壶基底的不溶性有机基质的提取 | 第18页 |
| 2.2.4 藤壶底壳的微观结构与晶型表征 | 第18-19页 |
| 2.2.5 藤壶底壳中有机组份分析 | 第19页 |
| 2.2.6 碳酸钙(再)结晶实验 | 第19-20页 |
| 2.3 实验结果讨论 | 第20-29页 |
| 2.3.1 藤壶钙质基底的形貌 | 第20-21页 |
| 2.3.2 藤壶基底的超微分层结构 | 第21-23页 |
| 2.3.3 藤壶基底的有机组份与天然矿物的对比分析 | 第23-27页 |
| 2.3.4 藤壶钙质基底溶解液的体外结晶 | 第27-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-31页 |
| 第三章 Bacp-19 k及 Mrcp-19 k蛋白的表达、纯化 | 第31-52页 |
| 3.1 试剂和仪器 | 第31-35页 |
| 3.1.1 试剂 | 第31-32页 |
| 3.1.2 仪器 | 第32-33页 |
| 3.1.3 主要实验溶液的配制 | 第33-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-42页 |
| 3.2.1 pET28a-Bacp-19 k、pET28a-Mrcp-19 k表达载体的构建方法 | 第35-39页 |
| 3.2.2 Bacp-19 k、Mrcp-19 k蛋白表达条件的优化 | 第39-40页 |
| 3.2.3 Bacp-19 k及 Mrcp-19 k蛋白的纯化 | 第40页 |
| 3.2.4 镍亲和色谱层析法纯化Bacp-19 k、Mrcp-19 k黏附蛋白 | 第40-41页 |
| 3.2.5 重组蛋白的性质表征 | 第41-42页 |
| 3.3 实验结果 | 第42-50页 |
| 3.3.1 pET28a-Bacp-19 k、pET28a-Mrcp-19 k表达载体的构建 | 第42页 |
| 3.3.2 Bacp-19 k及 Mrcp-19 k黏附蛋白表达条件的优化 | 第42-44页 |
| 3.3.3 Bacp-19 k及 Mrcp-19 k黏附蛋白的分离纯化 | 第44-48页 |
| 3.3.4 Bacp-19 k及 Mrcp-19 k蛋白的质谱检测 | 第48-49页 |
| 3.3.5 Bacp-19 k及 Mrcp-19 k蛋白的二级结构表征 | 第49-50页 |
| 3.4 本章小结 | 第50-52页 |
| 第四章 藤壶胶中蛋白质与SiO2表面的相互作用研究 | 第52-61页 |
| 4.1 试剂和仪器 | 第52-53页 |
| 4.1.1 试剂 | 第52页 |
| 4.1.2 仪器 | 第52-53页 |
| 4.2 主要实验溶液的配制 | 第53页 |
| 4.2.1 人工海水的配制 | 第53页 |
| 4.2.2 不同浓度的Bacp-19 k及 Mrcp-19 k黏附蛋白溶液的配制 | 第53页 |
| 4.3 实验内容 | 第53-55页 |
| 4.3.1 蛋白质在表面的吸附行为表征 | 第53-54页 |
| 4.3.2 Bacp-19 k、Mrcp-19 k在表面的聚集形貌表征 | 第54-55页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第55-59页 |
| 4.4.1 蛋白质在表面上的吸附行为表征 | 第55-58页 |
| 4.4.2 Bacp-19 k、Mrcp-19 k在表面的聚集形貌表征 | 第58-59页 |
| 4.5 本章小结 | 第59-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
