| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-21页 |
| 1.1 引言 | 第12页 |
| 1.2 甘薯抗氧化物质的研究 | 第12-16页 |
| 1.2.1 甘薯叶中黄酮类物质 | 第13-14页 |
| 1.2.2 植物类黄酮生物合成途径 | 第14-15页 |
| 1.2.3 甘薯叶中多酚类物质 | 第15-16页 |
| 1.2.4 甘薯叶中绿原酸 | 第16页 |
| 1.3 多酚和黄酮的提取方法 | 第16页 |
| 1.3.1 多酚的提取及测定 | 第16页 |
| 1.3.2 黄酮类化合物的提取方法 | 第16页 |
| 1.4 甘薯叶中的其他物质 | 第16-18页 |
| 1.4.1 蛋白质和氨基酸 | 第17页 |
| 1.4.2 糖类物质 | 第17-18页 |
| 1.4.3 维生素和矿物质 | 第18页 |
| 1.4.4 类胡萝卜素 | 第18页 |
| 1.4.5 激活剂和抑制剂 | 第18页 |
| 1.5 甘薯叶提取物的生物功能 | 第18-19页 |
| 1.5.1 抗氧化及清除自由基作用 | 第18-19页 |
| 1.5.2 预防心血管疾病作用 | 第19页 |
| 1.5.3 降血脂、降血糖作用 | 第19页 |
| 1.5.4 抗菌作用 | 第19页 |
| 1.5.5 抗肿瘤、抗癌作用 | 第19页 |
| 1.5.6 抗凝血作用 | 第19页 |
| 1.6 研究目的与意义 | 第19-21页 |
| 2 甘薯叶黄酮提取优化 | 第21-33页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-23页 |
| 2.1.1 试验材料样品制备 | 第21页 |
| 2.1.2 测定指标与方法 | 第21-22页 |
| 2.1.2.1 双水相体系分相能力的研究 | 第21页 |
| 2.1.2.2 不同种类无机盐与乙醇相图的绘制及分相能力考察 | 第21-22页 |
| 2.1.2.3 总黄酮的提取 | 第22页 |
| 2.1.2.4 黄酮提取率计算 | 第22页 |
| 2.1.3 试验仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.1.4 数据处理 | 第23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-32页 |
| 2.2.1 单因素影响试验 | 第23-26页 |
| 2.2.1.1 样品质量对黄酮提取率的影响 | 第23-24页 |
| 2.2.1.2 磷酸氢二钾质量对提取率的影响 | 第24-25页 |
| 2.2.1.3 乙醇质量对提取率的影响 | 第25页 |
| 2.2.1.4 超声时间对提取的影响 | 第25-26页 |
| 2.2.2 三因素响应面试验设计及结果 | 第26-32页 |
| 2.2.2.1 响应面分析 | 第28-32页 |
| 2.2.2.2 黄酮提取工艺的验证 | 第32页 |
| 2.3 讨论 | 第32-33页 |
| 3 甘薯叶绿原酸提取工艺优化 | 第33-44页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第33-34页 |
| 3.1.1 试验材料样品制备 | 第33页 |
| 3.1.2 绿原酸测定方法 | 第33-34页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第34页 |
| 3.1.4 数据处理 | 第34页 |
| 3.2 结果与分析 | 第34-42页 |
| 3.2.1 单因素试验 | 第34-37页 |
| 3.2.1.1 磷酸氢二钾质量对提取率的影响 | 第34-35页 |
| 3.2.1.2 样品质量对绿原酸提取率的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.1.3 乙醇质量分数对绿原酸提取率的影响 | 第36页 |
| 3.2.1.4 超声时间对绿原酸提取率的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.2 响应面试验设计 | 第37-39页 |
| 3.2.2.1 回归模型分析 | 第39页 |
| 3.2.3 响应面分析 | 第39-42页 |
| 3.2.4 绿原酸提取工艺验证 | 第42页 |
| 3.3 讨论 | 第42-44页 |
| 4 甘薯茎叶多酚提取工艺优化 | 第44-54页 |
| 4.1 材料与方法 | 第44页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第44页 |
| 4.1.2 指标测定方法 | 第44页 |
| 4.2 结果与分析 | 第44-53页 |
| 4.2.1 单因素试验结果 | 第44-48页 |
| 4.2.1.1 磷酸氢二钾用量对多酚提取率的影响 | 第44-45页 |
| 4.2.1.2 乙醇质量对多酚提取率的影响 | 第45-46页 |
| 4.2.1.3 超声时间对多酚提取率的影响 | 第46-47页 |
| 4.2.1.4 样品质量对多酚提取率的影响 | 第47-48页 |
| 4.2.2 响应面分析实验设计及结果 | 第48-49页 |
| 4.2.3 响应面分析 | 第49-53页 |
| 4.2.4 多酚提取工艺验证 | 第53页 |
| 4.3 讨论 | 第53-54页 |
| 5 甘薯抗氧化功能物质的品种间差异及IbPAP1和Iban1基因的表达分析 | 第54-71页 |
| 5.1 材料与方法 | 第54-58页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第54-55页 |
| 5.1.2 实验设计 | 第55页 |
| 5.1.3 指标测定方法 | 第55-58页 |
| 5.1.3.1 抗氧化能力的测定 | 第55-56页 |
| 5.1.3.2 维生素C含量测定 | 第56页 |
| 5.1.3.3 花青素测定 | 第56-57页 |
| 5.1.3.4 黄酮的测定 | 第57页 |
| 5.1.3.5 绿原酸的测定 | 第57页 |
| 5.1.3.6 多酚的测定 | 第57页 |
| 5.1.3.7 提取RNA | 第57页 |
| 5.1.3.8 RT-PCR | 第57-58页 |
| 5.1.4 主要仪器设备 | 第58页 |
| 5.1.5 数据处理 | 第58页 |
| 5.2 结果分析 | 第58-69页 |
| 5.2.1 甘薯不同品种间抗氧化功能成分的差异 | 第58-61页 |
| 5.2.1.1 甘薯叶和薯块抗氧化物质含量的品种间差异 | 第58-59页 |
| 5.2.1.2 甘薯茎叶抗氧化功能物质品种间差异 | 第59-61页 |
| 5.2.2 不同品种间甘薯叶抗氧化物质的相关性研究 | 第61-65页 |
| 5.2.3 甘薯茎叶对DPPH清除能力的品种间差异 | 第65-66页 |
| 5.2.4 品种间不同提取部位抗氧化功能成分的差异 | 第66-68页 |
| 5.2.5 IbPAP1和Iban1基因控制甘薯叶黄酮的表达分析 | 第68-69页 |
| 5.3 讨论 | 第69-71页 |
| 6 结论与展望 | 第71-74页 |
| 6.1 结论 | 第71-73页 |
| 6.1.1 磷酸氢二钾-乙醇双水相黄酮提取的优化 | 第71页 |
| 6.1.2 磷酸氢二钾-乙醇双水相绿原酸提取的优化 | 第71页 |
| 6.1.3 磷酸氢二钾-乙醇双水相多酚提取的优化 | 第71-72页 |
| 6.1.4 品种间抗氧化功能成分的差异及IbPAP1和Iban1基因的表达分析 | 第72-73页 |
| 6.2 展望 | 第73页 |
| 6.3 存在问题及后续研究 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 个人简历 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
