中文摘要 | 第4-8页 |
英文摘要 | 第8-12页 |
英文缩略语词汇表 | 第12-20页 |
第一章 前言 | 第20-29页 |
1.1 超顺磁氧化铁纳米颗粒(SPIONs)诱导的细胞生物学效应相关研究 | 第21-24页 |
1.1.1 SPIONs诱导细胞生物学效应 | 第22-23页 |
1.1.2 SPIONs诱导动物体内生物学效应 | 第23-24页 |
1.2 碲化镉量子点(CdTe-QDs)诱导的生物学效应相关研究 | 第24-27页 |
1.2.1 CdTe-QDs诱导细胞生物学效应 | 第25-26页 |
1.2.2 CdTe-QDs诱导动物体内生物学效应 | 第26-27页 |
1.3 本研究的目的和意义 | 第27-29页 |
第二章 材料和方法 | 第29-50页 |
2.1 实验材料 | 第29-34页 |
2.1.1 细胞 | 第29页 |
2.1.2 实验动物 | 第29页 |
2.1.3 主要试剂与耗材 | 第29-33页 |
2.1.4 主要仪器 | 第33-34页 |
2.2 检测指标和方法 | 第34-49页 |
2.2.1 纳米材料表征 | 第34页 |
2.2.2 细胞培养、冻存与复苏 | 第34-35页 |
2.2.3 细胞活力检测 | 第35-36页 |
2.2.4 Western Blot检测蛋白表达水平 | 第36-40页 |
2.2.5 qRT-PCR检测目的基因mRNA转录水平 | 第40-43页 |
2.2.6 免疫荧光检测相关蛋白的分布及表达 | 第43-44页 |
2.2.7 普鲁士蓝染色检测细胞内铁元素 | 第44页 |
2.2.8 石墨炉原子吸收法(GF-AAS)定量检测金属元素含量 | 第44-45页 |
2.2.9 ATP含量检测 | 第45页 |
2.2.10 线粒体膜电位检测(JC-1法) | 第45-46页 |
2.2.11 细胞内Ca~(2+)检测 | 第46页 |
2.2.12 线粒体ROS检测(Mito-Sox) | 第46页 |
2.2.13 报告基因检测 | 第46页 |
2.2.14 DNA microarray及数据分析 | 第46-47页 |
2.2.15 动物样本收集及生化指标检测 | 第47页 |
2.2.16 动物组织HE染色和免疫组化实验(IHC) | 第47-49页 |
2.2.17 小动物荧光成像 | 第49页 |
2.3 统计学方法 | 第49-50页 |
第三章 结果 | 第50-92页 |
3.1 SPIONs靶向细胞METC诱导肝癌细胞抗肿瘤作用的研究 | 第50-70页 |
3.1.1 SPIONs材料表征 | 第50-51页 |
3.1.2 SPIONs对癌细胞与正常细胞的存活率影响的差异 | 第51页 |
3.1.3 癌细胞和正常细胞对SPIONs摄取差异及胞内分布 | 第51-54页 |
3.1.4 SPIONs诱导癌细胞线粒体功能紊乱 | 第54-58页 |
3.1.5 SPIONs诱导正常细胞和癌细胞凋亡水平的差异 | 第58-59页 |
3.1.6 SPIONs诱导不同细胞抗氧化能力的差异 | 第59-64页 |
3.1.7 SPIONs诱导癌细胞METC基因表达的改变 | 第64-70页 |
3.2 CdTe-QDs诱导肾细胞ERS介导自噬的生物学效应研究 | 第70-92页 |
3.2.1 CdTe-QDs材料表征 | 第70页 |
3.2.2 CdTe-QDs诱导肾细胞毒性 | 第70-71页 |
3.2.3 CdTe-QDs定位内质网诱导内质网肿胀 | 第71-73页 |
3.2.4 CdTe-QDs诱导HEK细胞ERS及自噬 | 第73-79页 |
3.2.5 细胞摄取CdTe-QDs的含量 | 第79-83页 |
3.2.6 Cd元素在小鼠体内分布 | 第83-84页 |
3.2.7 CdTe-QDs对小鼠肾脏组织形态学和功能的影响 | 第84-86页 |
3.2.8 CdTe-QDs诱导小鼠肾脏ERS及自噬 | 第86-88页 |
3.2.9 ERS报告基因应用于纳米材料的筛选 | 第88-92页 |
第四章 讨论 | 第92-106页 |
4.1 纳米材料的生物医学应用及安全性问题 | 第92-94页 |
4.2 纳米材料对细胞线粒体的影响 | 第94-99页 |
4.3 纳米材料对内质网的影响 | 第99-102页 |
4.4 纳米材料安全性评价方法 | 第102-106页 |
第五章 结论与展望 | 第106-108页 |
5.1 结论 | 第106页 |
5.2 展望 | 第106-108页 |
参考文献 | 第108-120页 |
附录 | 第120-124页 |
致谢 | 第124-125页 |