| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-30页 |
| 1.1 蚕丝蛋白材料研究进展 | 第10-13页 |
| 1.2 蚕丝蛋白水凝胶研究进展 | 第13-20页 |
| 1.2.1 物理方法刺激诱导蚕丝蛋白凝胶化 | 第14-16页 |
| 1.2.2 化学试剂刺激诱导蚕丝蛋白凝胶化 | 第16-18页 |
| 1.2.3 化学交联固化蚕丝蛋白凝胶 | 第18-20页 |
| 1.3 多肽自组装研究进展 | 第20-26页 |
| 1.3.1 两亲性多肽自组装 | 第21-22页 |
| 1.3.2 含有脂肪族烷基链端基的两亲性多肽自组装 | 第22-23页 |
| 1.3.3 含有芳香族功能基团端基的多肽自组装 | 第23-26页 |
| 1.4 多肽小分子和天然大分子共自组装研究进展 | 第26-29页 |
| 1.5 本文研究内容及目的 | 第29-30页 |
| 第二章 多肽小分子自组装协同诱导蚕丝蛋白快速凝胶化的研究 | 第30-54页 |
| 2.1 引言 | 第30-31页 |
| 2.2 实验部分 | 第31-38页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第31-32页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第32-33页 |
| 2.2.3 凝胶因子NapFF制备与结构表征 | 第33-35页 |
| 2.2.4 蚕丝蛋白(SF)溶液的制备及浓度测定 | 第35页 |
| 2.2.5 NapFF和SF协同共自组装凝胶化测试与表征 | 第35-38页 |
| 2.2.5.1 凝胶因子NapFF和SF溶液的凝胶化测试与表征 | 第35-36页 |
| 2.2.5.2 水凝胶样品的透射电镜(TEM)测试与表征 | 第36页 |
| 2.2.5.3 水凝胶样品的扫描电镜(SEM)测试与表征 | 第36页 |
| 2.2.5.4 水凝胶样品的流变力学(Rheology)测试与表征 | 第36-37页 |
| 2.2.5.5 NapFF和SF协同共自组装最低成胶浓度测试 | 第37页 |
| 2.2.5.6 圆二色谱(CD)表征测试 | 第37页 |
| 2.2.5.7 红外光谱(FTIR)表征测试 | 第37页 |
| 2.2.5.8 紫外光谱(UV)表征测试 | 第37页 |
| 2.2.5.9 荧光光谱(FL)表征测试 | 第37-38页 |
| 2.2.5.10 混合凝胶可注射性测试及表征 | 第38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-53页 |
| 2.3.1 凝胶因子NapFF的合成及自组装性能研究 | 第38-41页 |
| 2.3.2 蚕丝蛋白溶液自组装性能研究 | 第41-42页 |
| 2.3.3 NapFF诱导SF协同自组装凝胶化物理表征研究 | 第42-45页 |
| 2.3.4 NapFF诱导SF协同自组装凝胶化机理探讨研究 | 第45-50页 |
| 2.3.5 NapFF诱导SF协同自组装构建可注射凝胶研究 | 第50-53页 |
| 2.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第三章 基于多肽—蚕丝蛋白混合水凝胶构建可诱导组织血管化材料的研究 | 第54-83页 |
| 3.1 引言 | 第54-55页 |
| 3.2 实验部分 | 第55-65页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第55-56页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第56-57页 |
| 3.2.3 凝胶因子NapFFRGD的制备与表征 | 第57-59页 |
| 3.2.4 NapFFRGD和SF协同自组装制备GelRGD | 第59-60页 |
| 3.2.5 蚕丝蛋白凝胶化影响因素 | 第60页 |
| 3.2.5.1 RGD和VEGF对SF凝胶化时间的影响 | 第60页 |
| 3.2.5.2 温度对GelRGD影响及表征测试 | 第60页 |
| 3.2.6 GelRGD生物特性测试研究 | 第60-63页 |
| 3.2.6.1 NapFF,NapFFRGD和SF的细胞毒性(CCK-8)测试 | 第60页 |
| 3.2.6.2 水凝胶的生物稳定性测试 | 第60-61页 |
| 3.2.6.3 GelRGD的体外酶降解测试 | 第61页 |
| 3.2.6.4 GelRGD的细胞培养测试 | 第61-62页 |
| 3.2.6.5 GelRGD的细胞骨架染色测试 | 第62页 |
| 3.2.6.6 GelRGD的抗体负对照测试 | 第62-63页 |
| 3.2.7 GelRGD对VEGF缓控释放测试 | 第63页 |
| 3.2.7.1 VEGF标准曲线的测定 | 第63页 |
| 3.2.7.2 VEGF释放速率的测定 | 第63页 |
| 3.2.7.3 从GelRGD中释放出的VEGF细胞毒性测试 | 第63页 |
| 3.2.8 含有VEGF的GelRGD诱导血管化实验 | 第63-64页 |
| 3.2.8.1 体外诱导HUVEC细胞成管化实验 | 第63-64页 |
| 3.2.8.2 体内诱导小鼠皮下血管新生实验 | 第64页 |
| 3.2.8.3 GelRGD在小鼠体内降解实验 | 第64页 |
| 3.2.8.4 H&E染色和CD31免疫荧光染色及定量统计分析 | 第64页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第64-65页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第65-82页 |
| 3.3.1 凝胶因子NapFFRGD的合成及GelRGD制备 | 第65-67页 |
| 3.3.2 蚕丝蛋白凝胶化影响因素研究 | 第67-68页 |
| 3.3.3 GelRGD多种生物特性测试研究 | 第68-75页 |
| 3.3.4 GelRGD对VEGF缓控释放研究 | 第75-76页 |
| 3.3.5 包裹有VEGF的GelRGD诱导血管化研究 | 第76-82页 |
| 3.3.5.1 体外诱导HUVEC细胞成管化研究 | 第76-77页 |
| 3.3.5.2 体内诱导小鼠皮下组织血管化研究 | 第77-82页 |
| 3.4 本章小结 | 第82-83页 |
| 第四章 结论与展望 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-91页 |
| 硕士论文工作期间科研成果 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93-95页 |
