| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1.引言 | 第10-19页 |
| 1.1 组织工程；研究概论 | 第11-14页 |
| 1.1.1 细胞的分裂与生长调控 | 第11-12页 |
| 1.1.2 细胞发育的主要环境因素 | 第12页 |
| 1.1.3 细胞三维培养在组织工程中的应用 | 第12-13页 |
| 1.1.4 组织工程的细胞基质 | 第13页 |
| 1.1.5 组织工程促进经济的发展 | 第13-14页 |
| 1.1.6 组织工程学前景广泛 | 第14页 |
| 1.2 组织工程用生物材料 | 第14-17页 |
| 1.2.1 PEGDA水凝胶研究概况 | 第15-17页 |
| 1.3 种子细胞 | 第17-18页 |
| 1.4 细胞与材料的相互作用 | 第18-19页 |
| 1.4.1 材料表面图案化对细胞的影响 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-30页 |
| 2.1 仪器和试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.1 仪器与设备 | 第19-20页 |
| 2.1.2 试剂与材料 | 第20页 |
| 2.2 细胞来源与溶液配置 | 第20-22页 |
| 2.2.1 细胞来源 | 第20页 |
| 2.2.2 试剂及培养基的配置 | 第20-22页 |
| 2.3 小鼠原代功能细胞的培养 | 第22-23页 |
| 2.3.1 小鼠神经原代细胞的分离与培养 | 第22页 |
| 2.3.2 神经元细胞的鉴定 | 第22-23页 |
| 2.3.3 小鼠心肌原代细胞的分离与培养，鉴定 | 第23页 |
| 2.4 iPS细胞的培养和纯化 | 第23-27页 |
| 2.4.1 小鼠成纤维细胞的分离培养 | 第24-25页 |
| 2.4.2 滋养层的制备 | 第25-26页 |
| 2.4.3 iPS细胞的传代培养 | 第26页 |
| 2.4.4 iPS细胞的纯化 | 第26页 |
| 2.4.5 iPS细胞拟胚体建立 | 第26-27页 |
| 2.5 PEGDA水凝胶上对细胞生长影响实验 | 第27-30页 |
| 2.5.1 PEGDA水凝胶的制备 | 第27页 |
| 2.5.2 PEG水凝胶的二次接枝 | 第27-28页 |
| 2.5.3 MTT法测PEG水凝胶上EC109的活性 | 第28页 |
| 2.5.4 MTT 法测 PEG 水凝胶上 MEF 细胞的活性 | 第28-29页 |
| 2.5.5 PEG水凝胶表面神经细胞的生长 | 第29页 |
| 2.5.6 PEG水凝胶表面心肌细胞的生长 | 第29页 |
| 2.5.7 PEG水凝胶表面IPS的诱导 | 第29-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-42页 |
| 3.1 小鼠原代功能细胞分离鉴定结果 | 第30-32页 |
| 3.1.1 小鼠原代神经元细胞的鉴定结果 | 第30-31页 |
| 3.1.2 小鼠原代心肌细胞的鉴定结果 | 第31-32页 |
| 3.2 iPS细胞培养纯化的结果 | 第32-35页 |
| 3.2.1 小鼠成纤维细胞的分离结果 | 第32-33页 |
| 3.2.2 iPS细胞的培养结果 | 第33页 |
| 3.2.3 iPS细胞纯化的结果与分析 | 第33-35页 |
| 3.3 PEG水凝胶对细胞生长分化影响的结果与分析 | 第35-42页 |
| 3.3.1 PEG水凝胶图案化及表面功能化的鉴定 | 第35-37页 |
| 3.3.2 PEG水凝胶对神经原代细胞的生长的影响结果与分析 | 第37-38页 |
| 3.3.3 PEG水凝胶对心肌原代细胞的生长的影响结果与分析 | 第38页 |
| 3.3.4 PEG水凝胶对EC109细胞株的生长的影响结果与分析 | 第38-39页 |
| 3.3.5 PEG水凝胶对MEF细胞的生长的影响结果与分析 | 第39-41页 |
| 3.3.6 iPS细胞在PEG水凝胶上诱导分化的结果 | 第41-42页 |
| 4 结论 | 第42-43页 |
| 5 讨论与展望 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
