| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 中英文缩写词对照表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-15页 |
| 2 材料和方法 | 第15-27页 |
| 2.1 研究对象和方法 | 第15页 |
| 2.1.1 小鼠的选择 | 第15页 |
| 2.1.2 血液和尿液标本的收集及测定 | 第15页 |
| 2.2 实验耗材与试剂 | 第15-18页 |
| 2.2.1 主要试剂及耗材 | 第15-17页 |
| 2.2.2 主要实验仪器设备 | 第17-18页 |
| 2.3 主要溶液的配制 | 第18页 |
| 2.4 仙台病毒的扩增及血凝价测定 | 第18-19页 |
| 2.4.1 仙台病毒扩增步骤 | 第18-19页 |
| 2.4.2 仙台病毒血凝价测定步骤 | 第19页 |
| 2.5 小鼠IgA肾病模型建立 | 第19-20页 |
| 2.6 IgA肾病小鼠肾脏组织标本留取及常规染色 | 第20-22页 |
| 2.6.1 肾脏组织取材 | 第20页 |
| 2.6.2 肾脏组织冰冻及石蜡切片制作 | 第20页 |
| 2.6.3 HE染色步骤 | 第20-21页 |
| 2.6.4 PAS染色步骤 | 第21页 |
| 2.6.5 Masson染色步骤 | 第21-22页 |
| 2.7 小鼠IgA肾病模型鉴定 | 第22页 |
| 2.7.1 直接免疫荧光法检测肾组织IgA、C3 沉积情况 | 第22页 |
| 2.7.2 免疫荧光结果判定方法 | 第22页 |
| 2.8 RT-qPCR检测肾组织中IL-1β、IL-6、MCP-1、TNF-α、TGF-β mRNA的表达量 | 第22-24页 |
| 2.8.1 肾组织总RNA提取 | 第22-23页 |
| 2.8.2 反转录 | 第23页 |
| 2.8.3 荧光定量PCR检测 | 第23-24页 |
| 2.9 免疫组织化学方法检测肾组织中肾组织CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、 CD68+ 单核巨噬细胞浸润及IL-1β、IL-6、MCP-1、TNF-α、TGF-β 的沉积 | 第24-26页 |
| 2.9.1 PV两步法检测实验组及对照组小鼠肾组织中CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、CD68+ 单核巨噬细胞浸润及IL-1β、IL-6、MCP-1、TNF-α、TGF-β 的表达量 | 第24-25页 |
| 2.9.2 免疫组织化学结果判定方法 | 第25-26页 |
| 2.10 统计学分析方法 | 第26-27页 |
| 3 结果 | 第27-34页 |
| 3.1 仙台病毒血凝价测定结果 | 第27页 |
| 3.2 各组小鼠24小时蛋白尿量及血清肌酐、尿素氮的结果比较 | 第27页 |
| 3.3 显微镜下观察各组小鼠肾组织病理改变 | 第27-29页 |
| 3.3.1 各组小鼠肾组织IgA及C3 沉积情况 | 第27-28页 |
| 3.3.2 各组小鼠肾组织光镜改变 | 第28-29页 |
| 3.4 各组小鼠肾组织IL-1β、IL-6、MCP-1、TNF-α、TGF-β mRNA相对表达量的比较 | 第29-30页 |
| 3.5 各组小鼠肾组织CD4+、CD8+、CD68+阳性细胞浸润及IL-1β、IL-6、MCP-1、TNF-α、TGF-β 等因子沉积情况 | 第30-32页 |
| 3.6 各组小鼠肾脏组织炎症因子mRNA表达量与蛋白尿的相关性分析 | 第32-33页 |
| 3.7 各组小鼠肾组织CD68+阳性细胞浸润及IL-1β、IL-6、MCP-1 的沉积情况与蛋白尿的相关性分析 | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-37页 |
| 5 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
| 综述 IgA肾病发病机制及治疗研究进展 | 第40-60页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 个人简历及在校期间发表的学术论文与研究成果 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
