| 摘要 | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1 肝脏组织中脂肪代谢的过程 | 第11-12页 |
| 1.1 脂质合成代谢过程 | 第11页 |
| 1.2 脂肪分解过程 | 第11-12页 |
| 2 肝脏中脂肪代谢的重要转录调控因子 | 第12页 |
| 2.1 SREBP-1c | 第12页 |
| 2.2 HNF-4α | 第12页 |
| 2.3 PPARα | 第12页 |
| 3 CREB-H基因相关研究进展 | 第12-15页 |
| 3.1 CREB/ATF家族 | 第13页 |
| 3.2 CREB-H研究概况 | 第13-15页 |
| 4 肝脏中CREB-H的调控基因 | 第15-17页 |
| 4.1 ApoCⅡ基因 | 第15-16页 |
| 4.2 ApoCⅢ基因 | 第16页 |
| 4.3 ApoAⅤ基因 | 第16-17页 |
| 4.4 其它目标基因 | 第17页 |
| 5 本研究研究目的与意义 | 第17-19页 |
| 第二章 马身猪和大白猪CREB-H和ApoCⅡ基因mRNA表达研究 | 第19-36页 |
| 1 材料与方法 | 第19-23页 |
| 1.1 试验材料 | 第19页 |
| 1.2 试验仪器与试剂 | 第19页 |
| 1.3 试验方法 | 第19-23页 |
| 2 结果与分析 | 第23-32页 |
| 2.1 RNA纯度检测 | 第23-24页 |
| 2.2 PCR扩增结果 | 第24页 |
| 2.3 荧光定量PCR标准曲线的建立 | 第24-25页 |
| 2.4 扩增动力学曲线 | 第25-26页 |
| 2.5 各基因扩增熔解曲线 | 第26-27页 |
| 2.6 马身猪和大白猪CREB-H基因mRNA表达特点 | 第27-29页 |
| 2.7 马身猪和大白猪ApoCⅡ基因mRNA表达 | 第29-31页 |
| 2.8 猪肝脏组织您公-i/与少oC分mRNA表达相关性 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-35页 |
| 3.1 关于实时荧光定量PCR方法 | 第32页 |
| 3.2 关于猪CREB-H基因组织表达特性的研究 | 第32-33页 |
| 3.3 关于猪CREB-H基因在肝脏组织中表达变化研究 | 第33页 |
| 3.4 关于猪ApoC Ⅱ基因组织表达特性的研究 | 第33-34页 |
| 3.5 关于猪ApoC Ⅱ在不同发育时期的mRNA表达研究 | 第34页 |
| 3.6 CREB-H与ApoC Ⅱ基因间相关性分析 | 第34-35页 |
| 4 小结 | 第35-36页 |
| 第三章 CREB-H基因在马身猪和大白猪中的蛋白表达研究 | 第36-46页 |
| 1 试验材料与方法 | 第36-41页 |
| 1.1 实验材料 | 第36页 |
| 1.2 试验仪器与试剂 | 第36-38页 |
| 1.3 试验方法 | 第38-41页 |
| 2 试验结果 | 第41-44页 |
| 2.1 总蛋白电泳检测结果 | 第41页 |
| 2.2 马身猪不同组织中CREB-H蛋白的表达 | 第41-42页 |
| 2.3 猪CREB-H基因在不同发育时期的蛋白表达 | 第42-44页 |
| 3 讨论 | 第44-45页 |
| 3.1 关于CREB-H蛋白在出生1日龄马身猪不同组织中的表达 | 第44页 |
| 3.2 关于CREB-H蛋白在马身猪和大白猪肝脏组织中的发育性表达 | 第44页 |
| 3.3 关于CREB-H基因在mRNA水平和蛋白水平上表达的差异 | 第44-45页 |
| 4 小结 | 第45-46页 |
| 第四章 cAMP通过CREB-H介导调控ApoCⅡ表达的研究 | 第46-53页 |
| 1 试验材料与方法 | 第46-49页 |
| 1.1 试验材料 | 第46页 |
| 1.2 试验仪器与试剂 | 第46-47页 |
| 1.3 试验方法 | 第47-49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-51页 |
| 2.1 猪原代肝细胞鉴定结果 | 第49页 |
| 2.2 猪传代后肝细胞形态变化 | 第49页 |
| 2.3 调控后CREB-H和AooC ⅡmRNA表达水平的变化 | 第49-51页 |
| 3 讨论 | 第51-52页 |
| 4 小结 | 第52-53页 |
| 全文总结及结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| Abstract | 第60-61页 |
| 附件 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
