摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
主要符号表 | 第12-13页 |
第一章 绪论 | 第13-28页 |
1.1 鱼藤素及其衍生物抗肿瘤作用研究进展 | 第13-20页 |
1.1.1 鱼藤素抗肿瘤作用国内外研究进展 | 第13-18页 |
1.1.2 鱼藤素衍生物抗肿瘤作用国内外研究进展 | 第18-20页 |
1.2 细胞周期与肿瘤细胞增殖的关系 | 第20-25页 |
1.2.1 细胞周期简介 | 第20-21页 |
1.2.2 细胞周期调控系统 | 第21-24页 |
1.2.3 CyclinD-CDK4/6复合体与肿瘤 | 第24-25页 |
1.3 裸鼠移植瘤模型 | 第25-26页 |
1.4 本课题研究的主要内容及意义 | 第26-28页 |
第二章 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物的合成 | 第28-35页 |
2.1 引言 | 第28页 |
2.2 鱼藤素的合成 | 第28-32页 |
2.2.1 试剂与器材 | 第28-30页 |
2.2.2 实验方法 | 第30-31页 |
2.2.3 结构表征 | 第31-32页 |
2.3 鱼藤素氨基甲酸酯衍生物的合成 | 第32-35页 |
2.3.1 试剂与器材 | 第32页 |
2.3.2 实验方法 | 第32-33页 |
2.3.3 结构表征 | 第33-34页 |
2.3.4 本章小结 | 第34-35页 |
第三章 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物体外抗肿瘤活性 | 第35-58页 |
3.1 引言 | 第35页 |
3.2 细胞系、材料与设备 | 第35-36页 |
3.3 实验方法 | 第36-40页 |
3.3.1 细胞准备实验 | 第36-37页 |
3.3.2 CCK-8实验 | 第37-38页 |
3.3.3 细胞划痕实验 | 第38页 |
3.3.4 PI单染实验 | 第38-39页 |
3.3.5 AnnexinV-FITC/PI双染实验 | 第39-40页 |
3.4 结果与讨论 | 第40-57页 |
3.4.1 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物抑制H1299、A549、MCF-7、Hela和PC-3细胞增殖 | 第40-47页 |
3.4.2 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物抑制H1299细胞划痕愈合能力 | 第47-51页 |
3.4.3 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物对H1299细胞周期的影响 | 第51-54页 |
3.4.4 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物诱导H1299细胞凋亡 | 第54-57页 |
3.5 本章小结 | 第57-58页 |
第四章 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物对H1299细胞中CyclinD-CDK4/6复合体的影响 | 第58-74页 |
4.1 引言 | 第58页 |
4.2 细胞系、材料与设备 | 第58-61页 |
4.3 实验方法 | 第61-67页 |
4.3.1 RT-qPCR实验 | 第61-64页 |
4.3.2 WesternBlot实验 | 第64-67页 |
4.4 结果与讨论 | 第67-73页 |
4.4.1 RT-qPCR实验检测CDK4、CDK6和CCND1的相对表达量 | 第68-71页 |
4.4.2 WesternBlot实验检测CDK4、CDK6和CyclinD1蛋白的相对表达量 | 第71-73页 |
4.5 本章小结 | 第73-74页 |
第五章 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物对H1299细胞裸鼠移植瘤的影响 | 第74-83页 |
5.1 引言 | 第74页 |
5.2 实验对象及主要设备 | 第74页 |
5.3 实验方法 | 第74-76页 |
5.3.1 细胞培养 | 第75页 |
5.3.2 建立动物模型 | 第75页 |
5.3.3 实验分组及给药处理 | 第75页 |
5.3.4 观测指标及标本收集处理 | 第75-76页 |
5.3.5 HE染色 | 第76页 |
5.4 结果与讨论 | 第76-82页 |
5.4.1 H1299裸鼠移植瘤成瘤情况 | 第76-77页 |
5.4.2 鱼藤素及其氨基甲酸酯衍生物对H1299裸鼠移植瘤的抑制效果 | 第77-81页 |
5.4.3 HE染色观察裸鼠移植瘤形态变化情况 | 第81-82页 |
5.5 本章小结 | 第82-83页 |
结论与展望 | 第83-84页 |
1.结论 | 第83页 |
2.创新点 | 第83页 |
3.展望 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-95页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第95-96页 |
致谢 | 第96-97页 |
附件 | 第97页 |