摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
引言 | 第11-13页 |
第1章 miR-204介导上皮性卵巢癌细胞抗失巢凋亡 | 第13-39页 |
1.1 实验材料 | 第13-15页 |
1.1.1 实验仪器 | 第13-14页 |
1.1.2 实验试剂 | 第14-15页 |
1.2 实验方法及步骤 | 第15-23页 |
1.2.1 细胞培养 | 第15-16页 |
1.2.2 失巢凋亡模型的建立 | 第16-17页 |
1.2.3 荧光定量PCR检测细胞的miR-204表达水平 | 第17-18页 |
1.2.4 pcDNA3.1(+)/ pre-miR-204质粒的构建 | 第18-20页 |
1.2.5 检测HO-8910卵巢癌细胞转染效率 | 第20-21页 |
1.2.6 细胞转染 | 第21页 |
1.2.7 转染后构建失巢凋亡模型 | 第21-22页 |
1.2.8 FACS检测4组细胞凋亡率 | 第22页 |
1.2.9 体外侵袭模型检测4组细胞的侵袭能力 | 第22页 |
1.2.10划痕实验检测4组细胞的迁移能力 | 第22-23页 |
1.2.11统计学分析 | 第23页 |
1.3 结果 | 第23-35页 |
1.3.1 SKOV-3、HO-8910贴壁生长和失巢凋亡状态下细胞形态 | 第23页 |
1.3.2 SKOV-3、HO-8910贴壁生长和失巢凋亡状态下miR-204表达水平存在差异性 | 第23-26页 |
1.3.3 riboTRACERTM转染指示剂检测HO-8910细胞转染效率 | 第26页 |
1.3.4 构建pre-miR-204质粒及转染HO-8910细胞后miR-204表达情况 | 第26-30页 |
1.3.5 上调HO-8910细胞miR-204表达后失巢凋亡率(%)增加 | 第30-32页 |
1.3.6 上调miR-204后HO-8910细胞侵袭和转移能力降低 | 第32-35页 |
1.4 讨论 | 第35-37页 |
1.5 小结 | 第37-39页 |
第2章 上调miR-204表达对上皮性卵巢癌细胞BDNF表达及AKT磷酸化的作用 | 第39-48页 |
2.1 实验材料 | 第39-40页 |
2.1.1 实验仪器 | 第39页 |
2.1.2 实验试剂 | 第39-40页 |
2.2 实验方法及步骤 | 第40-43页 |
2.2.1 生物信息学预测 | 第40页 |
2.2.2 转染后荧光定量PCR检测BDNF mRNA水平表达情况 | 第40-42页 |
2.2.3 Western Blot检测4组细胞中AKT蛋白的磷酸化水平 | 第42页 |
2.2.4 统计学分析 | 第42-43页 |
2.3 结果 | 第43-47页 |
2.3.1 上调miR-204对上皮性卵巢癌细胞BDNF mRNA表达的作用 | 第43-45页 |
2.3.2 上调miR-204对上皮性卵巢癌细胞AKT磷酸化的作用 | 第45-47页 |
2.4 讨论 | 第47-48页 |
2.5 小结 | 第48页 |
参考文献 | 第48-55页 |
综述 MicroRNAs介导上皮性卵巢癌细胞抗失巢凋亡的研究进展 | 第55-62页 |
3.1 抗失巢凋亡与卵巢癌 | 第55-57页 |
3.1.1 外源性受体途径 | 第55页 |
3.1.2 内源性途径 | 第55-56页 |
3.1.3 细胞间连接异常 | 第56页 |
3.1.4 EMT | 第56-57页 |
3.2 miRNAs与抗失巢凋亡 | 第57-58页 |
3.3 miRNAs与卵巢癌 | 第58-59页 |
3.3.1 miRNAs与卵巢癌侵袭转移 | 第58页 |
3.3.2 miRNAs与卵巢癌耐药 | 第58-59页 |
3.4 结语和展望 | 第59页 |
参考文献 | 第59-62页 |
结论 | 第62-63页 |
致谢 | 第63-64页 |
导师简介 | 第64-65页 |
作者简介 | 第65-67页 |
学位论文数据集 | 第67页 |