| 中文摘要 | 第5-8页 |
| 英文摘要 | 第8-11页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 縮略词对照表 | 第15-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 研究意义 | 第16页 |
| 国内外研究现状及发展动态分析 | 第16-18页 |
| 本研究设想 | 第18-19页 |
| 第一章 同轴静电喷雾技术制备一线抗结核药物壳核结构微球及体外释放研究 | 第19-49页 |
| 1.1 引言 | 第19-20页 |
| 1.2 材料与方法 | 第20-22页 |
| 1.2.1 主要试剂和耗材 | 第20-21页 |
| 1.2.2 主要的仪器 | 第21-22页 |
| 1.3 壳核结构微球制备条件探索 | 第22-24页 |
| 1.3.1 不同浓度溶剂准备 | 第22页 |
| 1.3.2 同轴静电喷雾参数设置 | 第22-24页 |
| 1.3.3 不同浓度的空白微球普通光镜下观察 | 第24页 |
| 1.3.4 CLSM下观察壳核结构微球 | 第24页 |
| 1.3.5 扫面电镜(SEM)观察微球结构 | 第24页 |
| 1.4 载药微球制备 | 第24-25页 |
| 1.4.1 分组情况 | 第24页 |
| 1.4.2 空白微球 | 第24-25页 |
| 1.4.3 载药微球制备 | 第25页 |
| 1.4.4 微球形态学观察 | 第25页 |
| 1.4.5 载药微球包封率测定 | 第25页 |
| 1.5 微球体外释放行为观察 | 第25-28页 |
| 1.5.1 检测样品的制备 | 第25页 |
| 1.5.2 检测条件 | 第25-26页 |
| 1.5.3 标准溶液的配制 | 第26-28页 |
| 1.6 统计方法 | 第28页 |
| 1.7 结果 | 第28-44页 |
| 1.7.1 壳核结构微球制备探索 | 第28-31页 |
| 1.7.2 空白微球及载药微球制备 | 第31-36页 |
| 1.7.3 载药微球药物包封率 | 第36页 |
| 1.7.4 体外释放行为检测 | 第36-44页 |
| 1.8 讨论 | 第44-48页 |
| 1.8.1 壳核结构微球制备理论 | 第44-45页 |
| 1.8.2 流速与微球的关系 | 第45-46页 |
| 1.8.3 载体浓度与微球制备关系 | 第46页 |
| 1.8.4 壳核结构微球的收集 | 第46-47页 |
| 1.8.5 壳核微球药物的载入 | 第47-48页 |
| 1.8.6 壳核结构微球体外释放行为研究 | 第48页 |
| 1.9 结论 | 第48-49页 |
| 第二章 壳核结构载药微球对SD大鼠BMSCS生物学行为的影响 | 第49-65页 |
| 2.1 引言 | 第49-50页 |
| 2.2 试验材料 | 第50-52页 |
| 2.2.1 细胞株来源 | 第50页 |
| 2.2.2 主要的试验仪器及材料 | 第50页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第50-51页 |
| 2.2.4 主要配制的试剂 | 第51-52页 |
| 2.3 试验方法 | 第52-55页 |
| 2.3.1 SD大鼠干细胞分离培养及鉴定 | 第52-53页 |
| 2.3.2 微球对SD大鼠BMSCs活性的影响 | 第53-54页 |
| 2.3.3 壳核结构微球对成骨诱导影响 | 第54-55页 |
| 2.3.4 微球对SD大鼠MSCs体外迁移能力的影响 | 第55页 |
| 2.4 统计分析 | 第55页 |
| 2.5 结果 | 第55-61页 |
| 2.5.1 SD大鼠BMSCs细胞体外培养的形态学 | 第55-56页 |
| 2.5.2 细胞周期检测结果 | 第56页 |
| 2.5.3 SD大鼠BMSCs表面抗原鉴定结果 | 第56-57页 |
| 2.5.4 SD大鼠BMSCs的成骨分化及成脂分化能力鉴定 | 第57-58页 |
| 2.5.5 微球对大鼠BMSCs生长的影响结果 | 第58-59页 |
| 2.5.6 微球对大鼠BMSCs活性的影响结果 | 第59-60页 |
| 2.5.7 微球对大鼠BMSCs成骨诱导的影响结果 | 第60-61页 |
| 2.5.8 微球对SD大鼠MSCs体外迁移能力的影响结果 | 第61页 |
| 2.6 讨论 | 第61-64页 |
| 2.6.1 骨髓基质干细胞的分离与鉴定 | 第61页 |
| 2.6.2 微球对骨髓基质干细胞增殖能力及活性 | 第61-62页 |
| 2.6.3 微球对骨髓基质干细胞诱导分化影响 | 第62-63页 |
| 2.6.4 微球对骨髓基质干细胞迁移能力影响 | 第63-64页 |
| 2.7 结论 | 第64-65页 |
| 第三章 微球局部植入对SD大鼠骨组织修复的影响研究及药物的分布情况 | 第65-80页 |
| 3.1 引言 | 第65页 |
| 3.2 主要试剂和设备 | 第65-67页 |
| 3.2.1 试剂和材料 | 第66页 |
| 3.2.2 主要设备 | 第66-67页 |
| 3.2.3 配置的试剂 | 第67页 |
| 3.3 实验方法 | 第67-69页 |
| 3.3.1 动物试验及分组说明 | 第67-68页 |
| 3.3.2 标本采集 | 第68页 |
| 3.3.3 检测方法 | 第68-69页 |
| 3.4 统计分析 | 第69页 |
| 3.5 结果 | 第69-76页 |
| 3.5.1 SD大鼠各组体重变化 | 第69-71页 |
| 3.5.2 各实验组SD大鼠影像学检查结果 | 第71-72页 |
| 3.5.3 骨组织HE染色 | 第72页 |
| 3.5.4 生化检查结果 | 第72-76页 |
| 3.5.5 药物在组织内的分部结果 | 第76页 |
| 3.6 讨论 | 第76-79页 |
| 3.6.1 模拟结核病灶清除后骨组织缺损模型 | 第76-77页 |
| 3.6.2 骨组织的愈合及植入材料的影响 | 第77-78页 |
| 3.6.3 微球局部植入对成骨细胞和破骨细胞的活跃性影响 | 第78页 |
| 3.6.4 一线抗结核药物SD大鼠体内分布 | 第78-79页 |
| 3.7 结论 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-94页 |
| 综述 | 第94-125页 |
| 参考文献 | 第112-125页 |
| 攻读博士学位期间主要研究成果 | 第125-127页 |
| 致谢 | 第127页 |
