| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词、符号及中文名称 | 第8-11页 |
| 1 前言 | 第11-21页 |
| 1.1 概况 | 第11页 |
| 1.2 水稻突变体的创造方式 | 第11-14页 |
| 1.2.1 自发突变 | 第11-12页 |
| 1.2.2 T-DNA插入 | 第12页 |
| 1.2.3 转座子诱变法 | 第12-13页 |
| 1.2.4 化学诱变和辐射诱变 | 第13-14页 |
| 1.3 图位克隆 | 第14-17页 |
| 1.3.1 图位克隆的原理和方法 | 第14-16页 |
| 1.3.2 图位克隆中常用的一些分子标记 | 第16-17页 |
| 1.4 小分子RNA | 第17-21页 |
| 1.4.1 小分子RNA的简介 | 第17页 |
| 1.4.2 植物中miRNA的合成与功能 | 第17-18页 |
| 1.4.3 植物中siRNA的合成与功能 | 第18-19页 |
| 1.4.4 tasi-RNA的产生与功能 | 第19-21页 |
| 1.5 选题依据与目的 | 第21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-32页 |
| 2.1 试验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 试验材料的EMS诱变处理 | 第22页 |
| 2.1.2 试验材料的田间种植 | 第22页 |
| 2.2 试验试剂及仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.1 试验试剂 | 第22页 |
| 2.2.2 试验仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 试验方法 | 第23-24页 |
| 2.3.1 水稻材料基因组DNA的提取 | 第23页 |
| 2.3.2 SSR分子标记多态性的筛选 | 第23-24页 |
| 2.3.3 PCR程序及其产物检测 | 第24页 |
| 2.4 PCR产物的电泳检测 | 第24-25页 |
| 2.4.1 琼脂糖电泳检测 | 第24-25页 |
| 2.4.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第25页 |
| 2.4.3 银染与显影 | 第25页 |
| 2.5 PCR产物的酶切鉴定 | 第25-26页 |
| 2.6 水稻总RNA提取与纯化 | 第26-27页 |
| 2.6.1 水稻总RNA提取 | 第26页 |
| 2.6.2 RNA的纯化并质检 | 第26-27页 |
| 2.7 RT-PCR与Real-time PCR | 第27-28页 |
| 2.7.1 RT-PCR反转录 | 第27页 |
| 2.7.2 RT-PCR反应程序 | 第27页 |
| 2.7.3 Real-time PCR | 第27-28页 |
| 2.7.4 Real-time PCR反应程序 | 第28页 |
| 2.8 水稻小分子RNA提取和Northern杂交 | 第28-32页 |
| 2.8.1 水稻小分子RNA的提取 | 第28-31页 |
| 2.8.2 水稻小分子RNA的Northern杂交 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-43页 |
| 3.1 水稻osrdr6-1突变体抑制子的遗传筛选及表型观察 | 第32-33页 |
| 3.2 水稻外稃芒状化恢复株hf1的形态观察 | 第33-34页 |
| 3.3 水稻外稃芒状化恢复株hf1的遗传分析 | 第34-35页 |
| 3.4 水稻外稃芒状化恢复株hf1的背景鉴定 | 第35-37页 |
| 3.5 水稻外稃异常恢复株hf1基因的定位 | 第37-41页 |
| 3.6 水稻中tasi-RNA的积累和tasiR-ARF靶基因的表达量 | 第41-43页 |
| 4. 结论与讨论 | 第43-46页 |
| 4.1 hf1的表型特征 | 第43-44页 |
| 4.2 hf1遗传分析及突变基因的图位克隆 | 第44-45页 |
| 4.3 tasiR-ARFs积累量差异 | 第45页 |
| 4.4 tasiR-ARF靶基因的表达量的变化 | 第45-46页 |
| 5. 研究展望 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 附录 | 第53页 |
