| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-10页 |
| 符号说明 | 第14-16页 |
| 引言 | 第16-19页 |
| 第一部分 TSA对HT22细胞氧化损伤的保护作用 | 第19-29页 |
| 前言 | 第19-20页 |
| 1 材料与方法 | 第20-24页 |
| 1.1 主要试剂及仪器 | 第20-21页 |
| 1.2 细胞系及细胞培养 | 第21页 |
| 1.3 HT22氧化损伤模型的建立 | 第21-22页 |
| 1.4 TSA添加浓度的确定 | 第22页 |
| 1.5 细胞分组处理 | 第22页 |
| 1.6 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第22页 |
| 1.7 Transwell检测细胞迁移能力 | 第22-23页 |
| 1.8 细胞中SOD和MDA含量的测定 | 第23-24页 |
| 1.9 细胞中ROS含量的测定 | 第24页 |
| 1.10 统计分析 | 第24页 |
| 2 结果 | 第24-27页 |
| 2.1 H_2O_2损伤浓度的确定和TSA添加的最适浓度 | 第24-25页 |
| 2.2 TSA对氧化损伤的HT22细胞凋亡的影响 | 第25-26页 |
| 2.3 TSA对氧化损伤的HT22细胞迁移的影响 | 第26页 |
| 2.4 TSA对氧化损伤的HT22细胞中SOD、MDA和ROS表达的影响 | 第26-27页 |
| 3 讨论 | 第27-28页 |
| 4 小结 | 第28-29页 |
| 第二部分 TSA联合BMSCs对SCI小鼠的神经保护作用和机制研究 | 第29-51页 |
| 前言 | 第29-30页 |
| 1 材料与方法 | 第30-41页 |
| 1.1 主要仪器及试剂 | 第30-31页 |
| 1.2 实验动物 | 第31-32页 |
| 1.3 脊髓损伤动物模型的建立 | 第32页 |
| 1.4 实验分组 | 第32页 |
| 1.5 小鼠的死亡率和体重状况 | 第32-33页 |
| 1.6 BMS评分（Basso Mouse Scale，BMS）评价小鼠的后肢运动功能 | 第33-34页 |
| 1.7 斜面放置（Inclined plane）实验评价小鼠的后肢力量 | 第34页 |
| 1.8 糖水偏嗜实验（Sucrose preference test，SPT）评价小鼠情绪状况 | 第34页 |
| 1.9 悬尾实验（Tail suspension test，TST）评价小鼠抑郁状况 | 第34页 |
| 1.10 CV染色测定损伤体积 | 第34-35页 |
| 1.11 脊髓水含量的检测 | 第35页 |
| 1.12 qRT-PCR检测小鼠神经分化和神经营养因子的表达 | 第35-37页 |
| 1.13 ELISA试剂盒检测炎症因子的表达 | 第37-38页 |
| 1.14 ROS含量的测定 | 第38页 |
| 1.15 免疫荧光染色检测星形胶质细胞、成熟神经元和白质的表达 | 第38-39页 |
| 1.16 PI测定坏死细胞 | 第39页 |
| 1.17 TUNEL试剂盒检测凋亡细胞 | 第39页 |
| 1.18 Westernblot实验检测Nrf2/ARE通路相关蛋白的表达 | 第39-41页 |
| 1.19 统计分析 | 第41页 |
| 2 结果 | 第41-48页 |
| 2.1 致死率 | 第41页 |
| 2.2 TSA联合BMSCs治疗改善小鼠后肢运动功能和情绪状况 | 第41-42页 |
| 2.3 TSA联合BMSCs治疗降低损伤体积,增加体重并减少脊髓含水量 | 第42-43页 |
| 2.4 TSA联合BMSCs增加神经分化和神经营养相关因子的表达，减轻损伤后的炎症反应 | 第43-44页 |
| 2.5 TSA联合BMSCs治疗减少星形胶质细胞的活化和活性氧的表达 | 第44-45页 |
| 2.6 TSA联合BMSCs治疗增加神经元细胞的表达并减少白质损伤 | 第45-46页 |
| 2.7 TSA联合BMSCs治疗降低损伤部位坏死和凋亡细胞数量 | 第46-47页 |
| 2.8 TSA激活Nrf2/ARE通路 | 第47-48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| 4 小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 综述 脊髓损伤和修复的细胞生物学机制 | 第60-73页 |
| 参考文献 | 第68-73页 |
| 个人简历、研究生期间发表的论文 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
