| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-12页 |
| 第2章 材料与方法-实验材料 | 第12-24页 |
| 2.1 细胞系 | 第12页 |
| 2.2 实验动物 | 第12页 |
| 2.3 基本材料 | 第12页 |
| 2.4 主要实验试剂 | 第12-13页 |
| 2.5 主要实验仪器 | 第13-14页 |
| 2.6 部分主要试剂配制 | 第14-16页 |
| 2.7 hESCs 的培养 | 第16-18页 |
| 2.7.1 hESCs 的复苏 | 第16-17页 |
| 2.7.2 hESCs 的日常培养和换液 | 第17页 |
| 2.7.3 hESCs 的传代 | 第17页 |
| 2.7.4 hESCs 的冻存 | 第17-18页 |
| 2.8 实验分组及步骤 | 第18-23页 |
| 2.8.1 hESCs 干性鉴定 | 第18-19页 |
| 2.8.2 Notch1 在两代细胞中的表达情况： | 第19-23页 |
| 2.9 统计学方法 | 第23-24页 |
| 第3章 实验结果 | 第24-31页 |
| 3.1 显微镜下观察 hESCs 形态学特征 | 第24页 |
| 3.2 碱性磷酸酶染色 | 第24-25页 |
| 3.3 免疫荧光染色 | 第25-27页 |
| 3.4 畸胎瘤组织切片观察 | 第27页 |
| 3.5 RNA 纯度及质量 | 第27-28页 |
| 3.6 Notch1 基因在各细胞组分的表达情况 | 第28-30页 |
| 3.7 Notch1 蛋白在各细胞组分的表达情况： | 第30-31页 |
| 第4章 讨论 | 第31-35页 |
| 4.1 自制无血清培养体系中 hESCs 干性维持分析 | 第32-34页 |
| 4.2 Notch1 表达变化与体外维持 hESCs 的“干性”潜在相关性分析 | 第34-35页 |
| 第5章 结论与展望 | 第35-36页 |
| 5.1 小结与结论 | 第35页 |
| 5.2 展望 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第40-41页 |
| 综述 | 第41-47页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
