| 缩略词表 | 第8-10页 |
| 摘要 | 第10-13页 |
| ABSTRACT | 第13-16页 |
| 1 文献综述及本研究的意义 | 第17-34页 |
| 1.1 荞麦的起源及其分类 | 第17-19页 |
| 1.1.1 荞麦的起源与演化 | 第17页 |
| 1.1.2 中国荞麦的分类 | 第17-19页 |
| 1.2 栽培荞麦的分布 | 第19页 |
| 1.3 荞麦的药用价值和营养价值 | 第19-20页 |
| 1.4 荞麦种质资源的收集保存 | 第20-21页 |
| 1.5 遗传多样性研究理论及方法 | 第21-31页 |
| 1.5.1 遗传多样性研究理论 | 第21-22页 |
| 1.5.2 遗传多样性研究方法 | 第22页 |
| 1.5.3 各类遗传标记及其在荞麦遗传多样性的研究现状 | 第22-31页 |
| 1.5.3.1 形态学标记 | 第22-23页 |
| 1.5.3.2 形态学标记在荞麦遗传多样性的研究现状 | 第23页 |
| 1.5.3.3 细胞学标记 | 第23-24页 |
| 1.5.3.4 细胞学标记在荞麦遗传多样性的研究现状 | 第24页 |
| 1.5.3.5 生化标记 | 第24-25页 |
| 1.5.3.6 生化标记在荞麦遗传多样性的研究现状 | 第25-26页 |
| 1.5.3.7 分子标记 | 第26-30页 |
| 1.5.3.8 分子标记在荞麦遗传多样性的研究现状 | 第30-31页 |
| 1.6 荞麦 SSR 指纹图谱构建研究进展 | 第31-33页 |
| 1.6.1 指纹图谱的理论依据 | 第31-32页 |
| 1.6.2 SSR 较其他分子标记的优势 | 第32页 |
| 1.6.3 数理统计 | 第32页 |
| 1.6.4 用于指纹图谱构建的 SSR 引物的选择 | 第32-33页 |
| 1.7 本研究的意义 | 第33-34页 |
| 1.8 本研究的目标 | 第34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-45页 |
| 2.1 试验材料 | 第34-37页 |
| 2.2 主要试验仪器及试剂 | 第37-38页 |
| 2.3 试验方法 | 第38-41页 |
| 2.3.1 性状的考察与测定 | 第38-39页 |
| 2.3.2 试验样品的制备 | 第39-41页 |
| 2.3.2.1 CTAB 法提取荞麦基因组 DNA | 第39页 |
| 2.3.2.2 试验试剂制备 | 第39-40页 |
| 2.3.2.3 DNA 提取步骤 | 第40页 |
| 2.3.2.4 检测 DNA 纯度和浓度 | 第40-41页 |
| 2.4 SSR 分子标记扩增 | 第41-44页 |
| 2.4.1 引物设计 | 第41页 |
| 2.4.2 引物筛选 | 第41-43页 |
| 2.4.2.1 扩增体系和反应程序 | 第41页 |
| 2.4.2.2 琼脂糖凝胶电泳检测扩增 | 第41-43页 |
| 2.4.2.3 SSR 扩增产物的判断 | 第43页 |
| 2.4.3 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 SSR 多态性 | 第43-44页 |
| 2.4.3.1 试验试剂 | 第43页 |
| 2.4.3.2 试验步骤 | 第43-44页 |
| 2.5 数据分析 | 第44-45页 |
| 3 结果与分析 | 第45-88页 |
| 3.1 农艺性状分析 | 第45-58页 |
| 3.1.1 遗传变异分析 | 第45-49页 |
| 3.1.2 相关分析 | 第49-52页 |
| 3.1.3 主成分分析 | 第52-54页 |
| 3.1.3.1 KMO (Kaiser-Meyer-Olkin) 检验 | 第52-53页 |
| 3.1.3.2 主成分的提取、命名以及主成分公式计算 | 第53-54页 |
| 3.1.4 通过逐步线性回归实现通径分析 | 第54-57页 |
| 3.1.4.1 15 个因子对小区种子产量的线性回归实现通径分析 | 第54页 |
| 3.1.4.2 13 个因子对平均株粒重的线性回归实现通径分析 | 第54-57页 |
| 3.1.5 聚类分析 | 第57-58页 |
| 3.1.5.1 农艺性状指标聚类 | 第57-58页 |
| 3.1.5.2 农艺性状种质聚类 | 第58页 |
| 3.2 SSR 遗传多样性研究 | 第58-78页 |
| 3.2.1 SSR 遗传多样性分析 | 第58-65页 |
| 3.2.1.1 43 对引物在 152 个普通荞麦种质中的遗传多样性分析 | 第58-62页 |
| 3.2.1.2 152 个普通荞麦种质聚类分析 | 第62-64页 |
| 3.2.1.3 152 个普通荞麦种质主坐标分析 | 第64-65页 |
| 3.2.2 普通荞麦群体及居群聚类分析 | 第65-70页 |
| 3.2.2.1 普通荞麦的种质类型群体聚类分析 | 第65-67页 |
| 3.2.2.2 贵州省地区普通荞麦居群聚类分析 | 第67页 |
| 3.2.2.3 气候类型划分国内普通荞麦种质的居群聚类分析 | 第67-68页 |
| 3.2.2.4 我国省级居群及与日本居群聚类分析 | 第68-70页 |
| 3.2.3 鉴定普通荞麦种质资源的 SSR 指纹图谱的构建 | 第70-78页 |
| 3.2.3.1 用于构建 SSR 指纹图谱的核心引物的确定 | 第70页 |
| 3.2.3.2 单引物鉴定能力分析 | 第70-77页 |
| 3.2.3.3 核心引物组合鉴定能力分析 | 第77页 |
| 3.2.3.4 4 对核心引物组合的 SSR 指纹图谱 | 第77-78页 |
| 3.3 农艺性状与 SSR 标记的相关性 | 第78-88页 |
| 4 讨论 | 第88-99页 |
| 4.1 农艺性状分析 | 第88-90页 |
| 4.2 SSR 遗传多样性研究 | 第90-93页 |
| 4.2.1 SSR 遗传多样性分析 | 第90-92页 |
| 4.2.2 普通荞麦群体及居群聚类分析 | 第92-93页 |
| 4.2.3 普通荞麦种质资源的 SSR 指纹图谱的构建 | 第93页 |
| 4.3 农艺性状和 SSR 分子标记的相关性 | 第93-99页 |
| 5 结论 | 第99-101页 |
| 5.1 农艺性状分析 | 第99页 |
| 5.2 SSR 遗传多样性研究 | 第99-100页 |
| 5.3 农艺性状与 SSR 标记的相关性 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-110页 |
| 附录 | 第110-133页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第133-134页 |
| 项目经费支持 | 第134-135页 |
| 致谢 | 第135-137页 |
