| 中文摘要 | 第4-5页 |
| 英文摘要 | 第5页 |
| 引言 | 第8-17页 |
| 一.肥胖的形成及其并发症 | 第8-9页 |
| (一)肥胖的形成 | 第8页 |
| (二)肥胖引起的并发症 | 第8-9页 |
| 二.脂肪组织的种类及其功能 | 第9-10页 |
| (一)白色脂肪组织 | 第9页 |
| (二)棕色脂肪组织 | 第9页 |
| (三)米色脂肪组织 | 第9-10页 |
| 三.与脂肪组织分化,功能相关的调节因子 | 第10-11页 |
| (一)UCP-1 | 第10页 |
| (二)PPARγ | 第10页 |
| (三)PGC-1α | 第10页 |
| (四)PRDM16 | 第10-11页 |
| (五)Leptin | 第11页 |
| 四.VEGF家族 | 第11-15页 |
| (一)VEGF家族及其受体 | 第11页 |
| (二)VEGF-A及其生物学功能 | 第11-12页 |
| (三)VEGF-B及其生物学功能 | 第12-15页 |
| 1.促血管生成作用 | 第12页 |
| 2.促进神经发生和神经细胞的保护 | 第12-13页 |
| 3.脂质代谢 | 第13-14页 |
| 4.VEGFB可作为靶向治疗胰岛素抵抗和二型糖尿病 | 第14页 |
| 5.VEGFB/VEGFR1信号通路可诱导脂肪组织血管系统的扩张来抵抗肥胖和与代谢相关的并发症 | 第14-15页 |
| (四)VEGF-C | 第15页 |
| (五)VEGF-D | 第15页 |
| 五.FATPs | 第15-17页 |
| 研究目的和意义 | 第17-18页 |
| 材料与方法 | 第18-25页 |
| 一 实验材料 | 第18页 |
| (一)化学试剂 | 第18页 |
| (二)实验器材 | 第18页 |
| 二 实验方法 | 第18-25页 |
| (一)VEGFB_(186)转基因鼠的获得 | 第18-19页 |
| (二)小鼠基因型鉴定 | 第19-20页 |
| (三)RNA提取 | 第20-21页 |
| (四)cDNA的合成 | 第21页 |
| (五)Real-time反应 | 第21-22页 |
| (六)小鼠体重测量 | 第22页 |
| (七)灌流与HE染色 | 第22-23页 |
| (八)小鼠体温检测 | 第23页 |
| (九)葡萄糖耐受实验 | 第23-24页 |
| (十)统计分析方法 | 第24-25页 |
| 实验结果 | 第25-39页 |
| 一 AP2-VEGFB_(186)小鼠的鉴定及检测 | 第25-26页 |
| 二 VEGFB_(186)能够引起小鼠体重及白色脂肪组织的减少 | 第26-31页 |
| (一)VEGFB_(186)对小鼠体重及摄食量的影响 | 第26-28页 |
| (二)VEGFB_(186)对小鼠脂肪组织的影响 | 第28-31页 |
| (三)VEGFB_(186)对脂肪组织相关基因表达的影响 | 第31页 |
| 三 VEGFB_(186)对脂肪酸转运蛋白的调控 | 第31-32页 |
| 四 AP2-VEGFB_(186)/VEGFB+/-小鼠的鉴定及检测 | 第32-34页 |
| 五 VEGFB_(186)能够抑制VEGFB单缺失小鼠体重的增加 | 第34-35页 |
| 六 VEGFB_(186)能够抑制VEGFB单缺失小鼠棕色脂肪细胞的白色化 | 第35-36页 |
| 七 VEGFB_(186)在VEGFB单缺失小鼠中对脂肪组织相关基因表达的影响 | 第36页 |
| 八 VEGFB_(186)在VEGFB单缺失小鼠中对两种脂肪酸转运蛋白的调控 | 第36-37页 |
| 九 VEGFB_(186)对小鼠体温的影响 | 第37-38页 |
| 十 VEGFB_(186)对葡萄糖代谢的调节 | 第38-39页 |
| 讨论 | 第39-41页 |
| 1.VEGFB_(186)在脂肪组织形态结构发育中的作用 | 第39-40页 |
| 2.VEGFB_(186)在能量代谢中的作用 | 第40-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 致谢 | 第48页 |
