| 缩略词表 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| Summary | 第9-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-38页 |
| 1 肾脏的组织发生 | 第11-13页 |
| 1.1 胚胎学 | 第11-12页 |
| 1.2 肾发生 | 第12页 |
| 1.3 组织学变化 | 第12-13页 |
| 1.4 功能的成熟 | 第13页 |
| 2 肾脏的一般组织学特征 | 第13-14页 |
| 3 肾脏的增龄性变化 | 第14-16页 |
| 3.1 大体解剖学 | 第14页 |
| 3.2 血管的变化 | 第14页 |
| 3.3 肾小球的变化 | 第14-15页 |
| 3.4 肾小管间质的改变 | 第15页 |
| 3.5 肾衰老的发病机理 | 第15-16页 |
| 4 肾脏功能的变化 | 第16-18页 |
| 4.1 肾小球和血管的变化 | 第16-17页 |
| 4.2 小管和间质的变化 | 第17页 |
| 4.3 内分泌的改变 | 第17-18页 |
| 5 肾相关因子的研究进展 | 第18-26页 |
| 5.1 EGFR | 第18-21页 |
| 5.1.1 EGFR的结构 | 第18-19页 |
| 5.1.2 EGFR的功能 | 第19-20页 |
| 5.1.3 EGFR与肾脏发育 | 第20-21页 |
| 5.2 BMPs | 第21-22页 |
| 5.2.1 BMPs的结构 | 第21页 |
| 5.2.2 BMPs的功能 | 第21-22页 |
| 5.2.3 BMPs与肾脏发育 | 第22页 |
| 5.3 p53 | 第22-26页 |
| 5.3.1 p53的结构 | 第22-23页 |
| 5.3.2 p53的功能 | 第23-24页 |
| 5.3.3 p53与肾脏发育 | 第24-26页 |
| 参考文献 | 第26-38页 |
| 第二部分 实验研究 | 第38-50页 |
| 第一章 ：不同年龄段牦牛肾脏的组织结构特征 | 第38-50页 |
| 1 引言 | 第38页 |
| 2 研究方法 | 第38-42页 |
| 2.1 材料 | 第38-39页 |
| 2.2 主要试剂 | 第39页 |
| 2.3 主要设备仪器 | 第39页 |
| 2.4 主要溶液和试剂的配制方法 | 第39-40页 |
| 2.4.14 %多聚甲醛固定液 | 第39-40页 |
| 2.4.2 Bouin液 | 第40页 |
| 2.4.3 schiff试剂 | 第40页 |
| 2.5 组织学切片制备 | 第40-41页 |
| 2.5.1 三种常规组织学染色 | 第40-41页 |
| 2.6 数据测量及统计分析 | 第41-42页 |
| 3 结果 | 第42-47页 |
| 3.1 牦牛肾脏的组织结构观察 | 第42-43页 |
| 3.2 不同年龄牦牛肾小体结构特征 | 第43-45页 |
| 3.3 不同年龄牦牛肾小管结构特征 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 5 小结 | 第49-50页 |
| 第二部分 实验研究 | 第50-66页 |
| 第二章 ：EGFR,BMP-2和p53在牦牛肾脏的分布研究 | 第50-61页 |
| 1 引言 | 第50-51页 |
| 2 研究方法 | 第51-52页 |
| 2.1 材料 | 第51页 |
| 2.2 组织学切片制备 | 第51页 |
| 2.3 免疫组织化学染色 | 第51-52页 |
| 2.4 数据测量及统计分析 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-57页 |
| 3.1 EGFR免疫组织化学标记 | 第52-53页 |
| 3.2 EGFR的光密度值测量 | 第53-54页 |
| 3.3 BMP-2免疫组织化学标记 | 第54-55页 |
| 3.4 BMP-2的光密度值测量 | 第55-56页 |
| 3.5 p53免疫组织化学标记 | 第56页 |
| 3.6 p53的光密度值测量 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| 5 小结 | 第59-60页 |
| 6 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 作者简介 | 第67-68页 |
| 导师简介 | 第68-69页 |