中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
第一章 前言 | 第14-48页 |
1.1 负载离子液体催化体系的二氧化碳固定 | 第14-23页 |
1.1.1 二氧化碳的化学固定 | 第14-15页 |
1.1.2 聚合物负载离子液体催化二氧化碳固定 | 第15-21页 |
1.1.3 影响负载催化体系催化二氧化碳固定过程的因素 | 第21-23页 |
1.2 聚合物负载催化体系 | 第23-31页 |
1.2.1 多孔材料 | 第23-24页 |
1.2.2 聚合物多孔材料制备 | 第24-28页 |
1.2.2.1 硬模板法合成聚合物多孔材料 | 第24-25页 |
1.2.2.2 软模板法合成聚合物多孔材料 | 第25-27页 |
1.2.2.3 无模板法合成聚合物多孔材料 | 第27-28页 |
1.2.3 多孔聚合物的功能化修饰 | 第28-31页 |
1.2.3.1 后修饰 | 第28-30页 |
1.2.3.2 骨架分子与功能性单体共聚合 | 第30-31页 |
1.3 金属离子荧光探针 | 第31-38页 |
1.3.1 金属离子探针及应用概述 | 第31-32页 |
1.3.2 生物体系中的金属离子分子探针 | 第32-37页 |
1.3.2.1 化学小分子探针 | 第32-33页 |
1.3.2.2 基于生物大分子的探针 | 第33-37页 |
1.3.3 展望 | 第37-38页 |
1.4 小结 | 第38页 |
参考文献 | 第38-48页 |
第二章 基于功能性季铵盐的多孔离子型聚合物催化二氧化碳合成环状碳酸酯 | 第48-69页 |
2.1 引言 | 第48-49页 |
2.2 实验部分 | 第49-51页 |
2.2.1 表征 | 第49-50页 |
2.2.2 催化剂的制备 | 第50-51页 |
2.2.2.1 HTA与BTA的合成 | 第50页 |
2.2.2.2 离子型多孔聚合物DVB-HTA和DVB-BTA的制备 | 第50-51页 |
2.2.2.3 典型的环加成反应过程 | 第51页 |
2.3 结果和讨论 | 第51-64页 |
2.3.1 催化剂的制备和表征 | 第51-55页 |
2.3.2 催化性能 | 第55-64页 |
2.4 结论 | 第64页 |
参考文献 | 第64-69页 |
第三章 基于三苯基膦的多孔离子型聚合物催化二氧化碳合成环状碳酸酯 | 第69-88页 |
3.1 引言 | 第69-70页 |
3.2 实验部分 | 第70-72页 |
3.2.1 原材料与方法 | 第70-71页 |
3.2.2 催化剂的合成 | 第71-72页 |
3.2.2.1 TPDB的合成 | 第71-72页 |
3.2.2.2 TPDB-BP的合成 | 第72页 |
3.2.2.3 TPDB-BP-TEA的合成 | 第72页 |
3.2.3 催化剂的测试 | 第72页 |
3.3 结果与讨论 | 第72-82页 |
3.3.1 催化剂的合成与表征 | 第72-76页 |
3.3.2 催化剂的催化性能 | 第76-82页 |
3.4 结论 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-88页 |
第四章 基于群体感应正反馈系统的高灵敏性汞离子全细胞探针的开发与研究 | 第88-130页 |
4.1 引言 | 第88-91页 |
4.2 实验材料 | 第91-94页 |
4.2.1 菌株、质粒 | 第91页 |
4.2.2 材料、试剂 | 第91页 |
4.2.3 主要仪器 | 第91-93页 |
4.2.4 试剂配方 | 第93-94页 |
4.2.4.1 培养基 | 第93页 |
4.2.4.2 其它溶液 | 第93-94页 |
4.3 实验方法 | 第94-114页 |
4.3.1 质粒提取 | 第94-95页 |
4.3.2 基因扩增 | 第95-97页 |
4.3.2.1 LuxR基因片段的扩增 | 第95-96页 |
4.3.2.2 LuxI基因扩增 | 第96-97页 |
4.3.3 PCR产物回收 | 第97页 |
4.3.4 酶切处理 | 第97-102页 |
4.3.4.1 LuxR基因酶切处理 | 第97-98页 |
4.3.4.2 LuxI基因酶切处理 | 第98页 |
4.3.4.3 Pcons2/psB1A2载体酶切处理 | 第98-99页 |
4.3.4.4 Pcons2-LuxR/psB1A2载体酶切处理 | 第99页 |
4.3.4.5 MerR-mer-LuxI/psB1A2载体酶切处理 | 第99页 |
4.3.4.6 Prlux/psB1A2载体酶切处理 | 第99-100页 |
4.3.4.7 Prlux-RFP/psB1A2载体酶切处理 | 第100页 |
4.3.4.8 Prlux-RFP-LuxI/psB1A2载体酶切处理 | 第100-101页 |
4.3.4.9 Prlux-RFP-LuxR/psB1A2载体酶切处理 | 第101页 |
4.3.4.10 MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR/psB1A2酶切处理 | 第101-102页 |
4.3.5 酶切产物回收 | 第102页 |
4.3.6 连接反应 | 第102-106页 |
4.3.6.1 LuxR片段连接到载体Prlux/psB1A2 | 第102-103页 |
4.3.6.2 LuxI片段连接到载体MerR-mer/pSBA2 | 第103页 |
4.3.6.3 Prlux-LuxR片段连接到载体MerR-mer-LuxI/pSB1A2 | 第103页 |
4.3.6.4 RFP片段连接到载体Prlux/psB1A2 | 第103-104页 |
4.3.6.5 LuxI片段连接到载体Prlux-RFP/psB1A2 | 第104页 |
4.3.6.6 LuxR片段连接到载体Prlux-RFP/psB1A2 | 第104-105页 |
4.3.6.7 Prlux-RFP基因连接到载体MerR-mer-LuxI- Prlux-LuxR /pSB1A2 | 第105页 |
4.3.6.8 Prlux-RFP-LuxI基因连接到载体MerR-mer-LuxI- Prlux-LuxR /pSB1A292 | 第105-106页 |
4.3.6.9 Prlux-RFP-LuxR基因连接到载体MerR-mer-LuxI- Prlux-LuxR/pSB1A2 | 第106页 |
4.3.7 E.coli感受态制备 | 第106页 |
4.3.8 E.coli转化 | 第106-107页 |
4.3.9 重组子筛选 | 第107-112页 |
2.2.9.1 Pcons2-LuxR/psB1A2重组子筛选 | 第107页 |
4.3.9.2 MerR-mer-LuxI/psB1A2重组子筛选 | 第107-108页 |
4.3.9.3 MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR/psB1A2重组子筛选 | 第108-109页 |
4.3.9.4 Prlux-RFP/psB1A2重组子筛选 | 第109页 |
4.3.9.5 Prlux-RFP-LuxI/psB1A2重组子筛选 | 第109-110页 |
4.3.9.6 Prlux-RFP-LuxR/psB1A2重组子筛选 | 第110页 |
4.3.9.7 MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR-Prlux-RFP/psB1A2t重组子筛选 | 第110-111页 |
4.3.9.8 MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR-Prlux-RFP- LuxI/psB1A2重组子筛选 | 第111页 |
4.3.9.9 MerR-mer- LuxI-Pcons2-LuxR-Prlux-RFP- LuxR/psB1 A2重组子筛选 | 第111-112页 |
4.3.10 基于群体感应和正反馈的汞全细胞探针的应用 | 第112-114页 |
4.3.10.1 探针对不同浓度的Hg~(2+)诱导2h的响应 | 第112页 |
4.3.10.2 一定Hg~(2+)浓度下探针在不同时间段的响应 | 第112-113页 |
4.3.10.3 细胞间群体感应和细胞内正反馈环共同调控的QS1对不同浓度的Hg~(2+)在不同时间段的响应 | 第113页 |
4.3.10.4 细胞间群体感应和细胞内正反馈环共同调控的QS2对不同浓度的Hg~(2+)在不同时间段的响应 | 第113页 |
4.3.10.5 细胞间群体感应和细胞内正反馈环共同调控的QS3对不同浓度的Hg~(2+)在不同时间段的响应 | 第113-114页 |
4.4 实验结果 | 第114-122页 |
4.4.1 三条基于正反馈体系的汞全细胞探针的构建 | 第114-122页 |
4.4.1.1 基于正反馈体系的汞全细胞探针质粒图谱 | 第114-115页 |
4.4.1.2 质粒MerR-mer-LuxI-/psB1A2的构建 | 第115页 |
4.4.1.3 质粒Pcons2-LuxR/psB1A2的构建 | 第115-116页 |
4.4.1.4 质粒Prlux-RFP/psB1A2的构建 | 第116-117页 |
4.4.1.5 质粒Prlux-RFP-LuxI/psB1A2的构建 | 第117-118页 |
4.4.1.6 质粒Prlux-RFP-LuxR/psB1A2的构建 | 第118页 |
4.4.1.7 质粒MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR/psB1A2的构建 | 第118-119页 |
4.4.1.8 质粒QS1 (MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR-Prlux-RFP-LuxI/psB1A2)的构建 | 第119-120页 |
4.4.1.9 质粒QS2(MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR-Prlux-RFP-LuxR/psB1A2)的构建 | 第120-121页 |
4.4.1.10 质粒QS3(MerR-mer-LuxI-Pcons2-LuxR-Prlux-RFP/psB1A2)的构建 | 第121-122页 |
4.5 结果和讨论 | 第122-125页 |
4.6 结论 | 第125-126页 |
4.7 参考文献 | 第126-130页 |
第五章 适用于模式微生物的全细胞氢气传感器的构建与功能验证 | 第130-160页 |
5.1 引言 | 第130-137页 |
5.2 实验材料 | 第137-141页 |
5.2.1 菌株和质粒 | 第137-138页 |
5.2.2 主要试剂和酶 | 第138页 |
5.2.3 实验仪器 | 第138-139页 |
5.2.4 分子克隆中使用的缓冲液和试剂的配制 | 第139-141页 |
5.3 实验内容 | 第141-149页 |
5.3.1 目标基因的来源 | 第141页 |
5.3.2 目的基因的修饰 | 第141页 |
5.3.3 目的片段PCR扩增 | 第141-142页 |
5.3.4 PCR产物检测 | 第142-143页 |
5.3.5 PCR产物纯化 | 第143页 |
5.3.6 PCR产物酶切 | 第143-144页 |
5.3.7 PCR产物胶回收 | 第144-145页 |
5.3.8 目的片段与载体的连接反应 | 第145页 |
5.3.9 连接产物的转化 | 第145页 |
5.3.10 重组菌体的筛选与鉴定 | 第145-147页 |
5.3.11 重组载体系统的检测与应用 | 第147-149页 |
5.4 实验结果 | 第149-154页 |
5.4.1 氢气检测系统质粒构建 | 第149-151页 |
5.4.2 对氢气响应的时间梯度的检测 | 第151-153页 |
5.4.4 氮气背景下的不同浓度氢气响应灵敏度检测 | 第153页 |
5.4.5 细菌蛋白表达纯化后的SDS-PAGE鉴定 | 第153-154页 |
5.5 结果和讨论 | 第154-156页 |
5.5.1 基因组拓扑学改造优化的结果讨论 | 第154-155页 |
5.5.2 改造过程中具体实验操作的细节问题及其解决方案的启发意义 | 第155页 |
5.5.3 优化改造完毕,从古菌整合入大肠杆菌后的实验结果讨论 | 第155-156页 |
5.5.4 本课题的实验思路概括,与抽象方法的拓展应用前景 | 第156页 |
5.6 参考文献 | 第156-160页 |
全文总结与展望 | 第160-162页 |
1、基于功能性季铵盐的多孔离子型聚合物催化二氧化碳合成环状碳酸酯 | 第160页 |
2、基于三苯基膦的多孔离子型聚合物催化二氧化碳合成环状碳酸酯 | 第160页 |
3、基于群体感应正反馈系统的高灵敏性汞离子全细胞探针的开发与研究 | 第160页 |
4、适用于模式微生物的全细胞氢气传感器的构建与功能验证 | 第160-162页 |
博士期间已发表的文章 | 第162-163页 |
致谢 | 第163-164页 |