| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 縮略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法、意义 | 第14-16页 |
| 一、BM MSCs的提取,培养,流式表型鉴定及HO-1转染 | 第16-24页 |
| 1.1 材料和方法 | 第16-17页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第16页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第16-17页 |
| 1.2 结果 | 第17-22页 |
| 1.2.1 BM MSCs的提取,原代、传代培养 | 第17-18页 |
| 1.2.2 BM MSCs的表型鉴定 | 第18页 |
| 1.2.3 HO-1转染 | 第18-22页 |
| 1.3 讨论 | 第22-24页 |
| 二、BM MSCs对体外淋巴细胞的抑制作用 | 第24-34页 |
| 2.1 材料和方法 | 第24-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.1.3 统计学方法 | 第26页 |
| 2.2 结果 | 第26-31页 |
| 2.2.1 BM MSCs的形态学观察及表型鉴定 | 第26页 |
| 2.2.2 ELISA法检测各组培养上清中3种细胞因子分泌量 | 第26页 |
| 2.2.3 MTT法检测BM MSCs对淋巴细胞增殖作用结果 | 第26-27页 |
| 2.2.4 流式检测Treg量结果 | 第27-31页 |
| 2.3 讨论 | 第31-34页 |
| 三、HO-1/MSCs及BM MSCs对大鼠小肠缺血再灌注损伤的修复作用 | 第34-47页 |
| 3.1 材料和方法 | 第34-38页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.2 结果 | 第38-43页 |
| 3.2.1 BM MSCs的形态学观察及表型鉴定 | 第38页 |
| 3.2.2 B16-F10-Luc-G5细胞示踪结果 | 第38页 |
| 3.2.3 术后大鼠的一般状态 | 第38页 |
| 3.2.4 各组大鼠血清DAO、D-乳酸和TNF-α的含量 | 第38-40页 |
| 3.2.5 各组大鼠小肠病理改变(光镜和电镜) | 第40-41页 |
| 3.2.6 各组大鼠小肠Occludin的表达 | 第41-43页 |
| 3.3 讨论 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第52-53页 |
| 附录 | 第53-55页 |
| 综述 | 第55-63页 |
| 综述参考文献 | 第60-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
