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右美托咪定通过p38 MAPK信号通路减轻大鼠脑缺血再灌注损伤和抑制凋亡的研究

摘要第4-7页
Abstract第7-10页
英文缩略词索引第14-15页
1. 前言第15-17页
2. 材料与方法第17-31页
    2.1 实验材料第17-22页
        2.1.1 实验动物第17页
        2.1.2 主要试剂与药品第17-18页
        2.1.3 主要仪器与设备第18-19页
        2.1.4 溶液及试剂配制第19-22页
    2.2 主要实验方法第22-25页
        2.2.1 实验分组第22-23页
        2.2.2 脑缺血再灌注模型制备第23-24页
        2.2.3 神经功能评分第24页
        2.2.4 动物模型的评价第24-25页
    2.3 给药方式第25-26页
        2.3.1 右美托咪定第25页
        2.3.2 p38抑制剂SB203580第25页
        2.3.3 α_2 受体抑制剂育亨宾第25-26页
    2.4 脑水肿程度和脑梗死体积的测定第26-27页
    2.5 免疫荧光第27-28页
        2.5.1 灌注取脑第27页
        2.5.2 冰冻切片第27页
        2.5.3 免疫荧光染色第27-28页
        2.5.4 抗体配制第28页
    2.6 蛋白免疫印记实验第28-30页
        2.6.1 蛋白质提取第28-29页
        2.6.2 测定蛋白浓度第29页
        2.6.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第29-30页
        2.6.4 抗体配制第30页
    2.7 统计学分析第30-31页
3. 实验结果第31-39页
    3.1 缺血再灌注模型评价第31-32页
    3.2 神经功能评分第32页
    3.3 脑水肿程度第32-33页
    3.4 脑梗死体积第33-34页
    3.5 缺血区脑组织细胞凋亡情况第34-35页
    3.6 缺血区脑组织p-p38表达情况第35-36页
    3.7 p-p38与NeuN、GFAP、Ox-42免疫荧光双标第36-37页
    3.8 缺血区脑组织p-p38和表达情况第37-39页
4. 讨论第39-45页
    4.1 脑缺血再灌注模型的建立第39-40页
    4.2 右美托咪定对脑缺血再灌注损伤和神经细胞凋亡的影响第40-41页
    4.3 右美托咪定与SB203580对大鼠脑缺血再灌注损伤的影响对比第41-43页
    4.4 右美托咪定在对抗脑缺血再灌注损伤中对p38MAPK通路的影响与α_2受体的关系第43-45页
5. 结论第45-46页
6. 参考文献第46-49页
综述 右美托咪定在缺血再灌注损伤中的的应用和作用机制第49-68页
    1. 简介第49-50页
    2. 缺血再灌注损伤的分子机制第50页
    3. 右美托咪定的作用机制第50-55页
        3.1. 递质释放第50-51页
        3.2. 离子通道第51页
        3.3. 信号通路第51-53页
        3.4. 基因表达第53页
        3.5. 炎症反应第53-55页
    4. 右美托咪定在I/R损伤中的作用第55-59页
        4.1. 脑保护作用第55-56页
        4.2. 脊髓保护作用第56-57页
        4.3. 心肌保护作用第57页
        4.4. 肺保护作用第57-58页
        4.5. 肾脏保护作用第58页
        4.6. 肠保护作用第58-59页
        4.7. 肝脏保护作用第59页
        4.8. 其他脏器保护作用第59页
    5. 总结第59-61页
    6. 参考文献第61-68页
个人简历第68-69页
致谢第69页

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