应用肥大化软骨细胞和海藻酸钠复合物栓塞治疗动静脉畸形的研究
| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 动静脉畸形 | 第11-13页 |
| 1.1.1 动静脉畸形好发部位 | 第11-12页 |
| 1.1.2 动静脉畸形的诊断方法 | 第12页 |
| 1.1.3 动静脉畸形的治疗措施 | 第12-13页 |
| 1.2 目前应用的栓塞材料 | 第13-17页 |
| 1.2.1 固体栓塞材料 | 第13-14页 |
| 1.2.2 粘附性液体栓塞材料 | 第14页 |
| 1.2.3 非粘附性液体栓塞材料（沉淀聚合物） | 第14-15页 |
| 1.2.4 水凝胶栓塞材料 | 第15-17页 |
| 1.3 种子细胞来源 | 第17-20页 |
| 1.3.1 成纤维细胞 | 第17页 |
| 1.3.2 骨髓间充质干细胞 | 第17-18页 |
| 1.3.3 软骨细胞 | 第18页 |
| 1.3.4 肥大化软骨细胞 | 第18-20页 |
| 第2章 材料与方法 | 第20-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验仪器和设备 | 第20-21页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第21页 |
| 2.1.3 主要试剂的配制 | 第21-22页 |
| 2.1.4 实验动物 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.2.1 细胞分离和培养 | 第22-23页 |
| 2.2.2 细胞生长曲线 | 第23页 |
| 2.2.3 细胞肥大化诱导 | 第23页 |
| 2.2.4 Alcian Blue染色 | 第23页 |
| 2.2.5 细胞免疫荧光检测 | 第23-24页 |
| 2.2.6 海藻凝胶的制备 | 第24页 |
| 2.2.7 细胞活力检测 | 第24页 |
| 2.2.8 RNA提取及RT-PCR | 第24-26页 |
| 2.2.9 裸鼠皮下移植 | 第26页 |
| 2.2.10 兔肾动脉栓塞实验 | 第26页 |
| 2.2.11 统计学分析 | 第26-27页 |
| 第3章 实验结果 | 第27-36页 |
| 3.1 软骨细胞生长状况 | 第27-31页 |
| 3.1.1 P1、P3、P5代软骨细胞的生长曲线 | 第27页 |
| 3.1.2 软骨细胞的肥大化诱导 | 第27-29页 |
| 3.1.3 肥大化软骨细胞的鉴定 | 第29-31页 |
| 3.2 海藻凝胶的浓度筛选 | 第31-32页 |
| 3.2.1 海藻酸钠浓度的选定 | 第31页 |
| 3.2.2 CaCl_2浓度的选定 | 第31-32页 |
| 3.3 海藻凝胶-细胞复合物 | 第32-34页 |
| 3.3.1 细胞在海藻凝胶中的状态 | 第32页 |
| 3.3.2 海藻凝胶中细胞的活力检测 | 第32-33页 |
| 3.3.3 海藻凝胶-细胞复合物的生物相容性检测 | 第33-34页 |
| 3.4 兔肾动脉栓塞实验 | 第34-36页 |
| 讨论 | 第36-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-44页 |
| 作者简介 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45页 |
