| 缩略词表 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一章 异丙酚对脑缺血再灌注损伤神经元的保护作用及其作用机制研究 | 第17-39页 |
| 材料 | 第17-19页 |
| 方法 | 第19-26页 |
| 1. 溶液配制 | 第19-20页 |
| 2. SH-SY5Y神经细胞存活、细胞凋亡测定 | 第20-21页 |
| 3. 海马细胞形态观察、细胞凋亡测定 | 第21页 |
| 4. 海马细胞钙成像实验 | 第21-22页 |
| 5. SD大鼠MCAO模型制作 | 第22-23页 |
| 6. MCAO大鼠死亡率、体重测定及神经评分 | 第23-24页 |
| 7. 水迷宫实验 | 第24-25页 |
| 8. 脑梗塞体积测定 | 第25页 |
| 9. 病理组织学观测 | 第25页 |
| 10. 免疫印迹检测蛋白表达 | 第25-26页 |
| 11. 统计学处理 | 第26页 |
| 结果 | 第26-37页 |
| 0. 异丙酚减少SH-SY5Y神经细胞OGD后的凋亡率 | 第26-27页 |
| 1. 异丙酚对海马细胞OGD后引起的细胞形态变化及细胞凋亡的影响 | 第27-29页 |
| 2. 异丙酚延迟海马细胞OGD后的钙内流 | 第29页 |
| 3. MCAO模型的建立 | 第29-30页 |
| 4. 异丙酚对MCAO后大鼠死亡率的影响 | 第30-31页 |
| 5. 异丙酚对MCAO后大鼠体重及神经功能评分的影响 | 第31-32页 |
| 6. 异丙酚对MCAO大鼠行为功能的影响 | 第32-34页 |
| 7. 异丙酚对MCAO大鼠脑梗塞体积的影响 | 第34-35页 |
| 8. 异丙酚对MCAO大鼠病理组织学染色的影响 | 第35页 |
| 9. 异丙酚对MCAO大鼠突触素表达的影响 | 第35-37页 |
| 讨论 | 第37-39页 |
| 第二章 IL-1RA对脑缺血再灌注损伤神经元的保护作用及其作用机制研究 | 第39-58页 |
| 材料 | 第39-40页 |
| 方法 | 第40-42页 |
| 1. SH-SY5Y神经细胞存活、细胞凋亡测定 | 第40页 |
| 2. 海马细胞形态观察、细胞凋亡测定 | 第40页 |
| 3. 海马细胞免疫细胞化学 | 第40-41页 |
| 5. MCAO大鼠死亡率、体重测定及神经评分 | 第41页 |
| 6. 水迷宫实验 | 第41页 |
| 7. 病理组织学观测 | 第41-42页 |
| 8. 免疫组织化学检测 | 第42页 |
| 9. 免疫印迹检测蛋白表达 | 第42页 |
| 10. 统计学处理 | 第42页 |
| 结果 | 第42-56页 |
| 1. IL-1RA对SH-SY5Y神经细胞OGD引起的细胞凋亡的影响 | 第42-43页 |
| 2. IL-1RA对海马细胞OGD后引起的细胞形态变化及细胞凋亡的影响 | 第43-44页 |
| 3. IL-1RA对海马细胞钙内流的影响 | 第44-45页 |
| 4. IL-1RA对海马细胞OGD后引起的突触素、GAP-43 表达的影响 | 第45-47页 |
| 5. IL-1RA对MCAO后大鼠死亡率的影响 | 第47页 |
| 6. IL-1RA对MCAO后大鼠体重及神经症状评分的影响 | 第47-49页 |
| 7. IL-1RA对MCAO大鼠行为功能的影响 | 第49-50页 |
| 8. IL-1RA对MCAO大鼠病理组织学染色的影响 | 第50-52页 |
| 9. IL-1RA对MCAO大鼠突触素表达的影响（免疫组化） | 第52-54页 |
| 10. IL-1RA对MCAO大鼠突触素表达的影响(免疫印迹) | 第54-56页 |
| 讨论 | 第56-58页 |
| 第三章 PTD-BDNF对脑缺血再灌注损伤神经元的保护作用及其作用机制研究 | 第58-75页 |
| 材料 | 第59页 |
| 方法 | 第59-62页 |
| 1. SH-SY5Y神经细胞存活、细胞凋亡测定 | 第59-60页 |
| 2. 海马细胞形态观察、细胞凋亡测定 | 第60页 |
| 3. 海马细胞钙成像实验 | 第60页 |
| 4. 海马细胞免疫细胞化学 | 第60-61页 |
| 5. MCAO大鼠死亡率、体重测定及神经评分 | 第61页 |
| 6. 水迷宫实验 | 第61页 |
| 7. 免疫组织化学检测 | 第61-62页 |
| 9. 免疫印迹检测蛋白表达 | 第62页 |
| 10. 统计学处理 | 第62页 |
| 结果 | 第62-74页 |
| 1. PTD-BDNF对SH-SY5Y神经细胞OGD引起的细胞凋亡的影响 | 第62-63页 |
| 2. PTD-BDNF对海马细胞OGD后引起的细胞形态变化及细胞凋亡的影响 | 第63-64页 |
| 3. PTD-BDNF对OGD后海马细胞钙内流的影响 | 第64-65页 |
| 4. PTD-BDNF对海马细胞OGD后引起的突触素、GAP-43 表达的影响 | 第65-67页 |
| 5. PTD-BDNF对MCAO后大鼠死亡率的影响 | 第67页 |
| 6. PTD-BDNF对MCAO后大鼠体重及神经症状评分的影响 | 第67-69页 |
| 7. PTD-BDNF对MCAO大鼠行为功能的影响 | 第69-71页 |
| 8. PTD-BDNF对MCAO大鼠Brdu表达的影响 | 第71-72页 |
| 9. PTD-BDNF对MCAO大鼠突触素表达的影响 | 第72-74页 |
| 讨论 | 第74-75页 |
| 第四章 不同因子组合用于脑缺血再灌注损伤的神经保护治疗策略初探 | 第75-85页 |
| 材料 | 第75-76页 |
| 方法 | 第76-77页 |
| 1.海马细胞免疫细胞化学 | 第76页 |
| 2.MCAO大鼠死亡率、体重测定及神经评分 | 第76-77页 |
| 3.统计学处理 | 第77页 |
| 结果 | 第77-84页 |
| 1. 不同因子组合对海马细胞OGD后引起的突触素、GAP-43 表达的影响 | 第77-81页 |
| 2. 不同因子组合对MCAO后大鼠死亡率的影响 | 第81-82页 |
| 3. 不同因子组合对MCAO后大鼠体重的影响 | 第82页 |
| 4. 不同因子组合对MCAO后大鼠pellotu评分的影响 | 第82-83页 |
| 5. 不同因子组合对网屏测验评分的影响 | 第83-84页 |
| 讨论 | 第84-85页 |
| 结论 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-88页 |
| 综述 | 第88-101页 |
| 参考文献 | 第95-101页 |
| 论著 | 第101-109页 |
| 个人简历 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110页 |
