| 摘要 | 第2-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 引言 | 第12-15页 |
| 第一部分 HDAC2在大肠癌中表达及细胞功能研究 | 第15-31页 |
| 1.1 前言 | 第15-16页 |
| 1.2 材料和方法 | 第16-26页 |
| 1.2.1 试剂及耗材 | 第16-17页 |
| 1.2.2 实验仪器 | 第17-18页 |
| 1.2.3 相关溶液的配制 | 第18-19页 |
| 1.2.4 病理的选择标准 | 第19-20页 |
| 1.2.5 标本的采取与储存 | 第20页 |
| 1.2.6 细胞培养 | 第20-21页 |
| 1.2.7 应用荧光定量聚合酶链式反应（qRT-PCR） | 第21-24页 |
| 1.2.8 慢病毒转染 | 第24页 |
| 1.2.9 细胞活力分析 | 第24页 |
| 1.2.10 蛋白质免疫印迹（Western blot）分析 | 第24-25页 |
| 1.2.11 统计学分析 | 第25-26页 |
| 1.3 实验结果 | 第26-27页 |
| 1.3.1 HDAC2在人大肠癌组织中的表达 | 第26页 |
| 1.3.2 在人大肠癌细胞系HCT116中沉默HDAC2 | 第26-27页 |
| 1.3.3 HDAC2沉默抑制大肠癌细胞HCT116细胞增殖 | 第27页 |
| 1.4 讨论 | 第27-31页 |
| 第二部分 miRNA-455 对大肠癌细胞（HCT116）中的HDAC2的调节作用 | 第31-42页 |
| 2.1 前言 | 第31-32页 |
| 2.2 材料与方法 | 第32-38页 |
| 2.2.1 试剂及耗材 | 第32-33页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第33-34页 |
| 2.2.3 细胞培养 | 第34页 |
| 2.2.4 miRNA转染 | 第34页 |
| 2.2.5 HDAC2靶基因预测 | 第34-35页 |
| 2.2.6 荧光素酶活性分析 | 第35页 |
| 2.2.7 应用荧光定量聚合酶链式反应（qRT-PCR） | 第35-36页 |
| 2.2.8 蛋白抽提及定量 | 第36-37页 |
| 2.2.9 Western blot检测 | 第37-38页 |
| 2.2.10 统计方法 | 第38页 |
| 2.3 实验结果 | 第38-39页 |
| 2.3.1 miR-455直接靶标HCT116细胞中的HDAC2 | 第38-39页 |
| 2.3.2 过表达的miR-455降低了HCT116细胞中的HDAC2的表达 | 第39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-42页 |
| 第三部分 过表达microRNA-455抑制HCT116细胞增殖并促进凋亡 | 第42-50页 |
| 3.1 前言 | 第42-43页 |
| 3.2 材料和方法 | 第43-45页 |
| 3.2.1 试剂及耗材 | 第43-44页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第44页 |
| 3.2.3 细胞培养 | 第44-45页 |
| 3.2.4 miRNA转染 | 第45页 |
| 3.2.5 细胞活力分析 | 第45页 |
| 3.2.6 细胞凋亡分析 | 第45页 |
| 3.2.7 统计方法 | 第45页 |
| 3.3 实验结果 | 第45-47页 |
| 3.3.1 过表达miR-455抑制HCT116细胞增殖 | 第45-46页 |
| 3.3.2 过表达miR-455促进HCT116细胞凋亡 | 第46-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 综述 | 第58-74页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第74-75页 |
| 英文缩略词对照表 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
