| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-23页 |
| 1 硬骨鱼类促性腺激素相关研究概况 | 第15-18页 |
| 1.1 鱼类促性腺激素的种类和结构 | 第15-16页 |
| 1.2 鱼类促性腺激素的功能研究 | 第16-17页 |
| 1.3 鱼类促性腺激素与受体结合特点 | 第17-18页 |
| 2 半滑舌鳎繁殖生物学研究进展 | 第18-21页 |
| 2.1 半滑舌鳎人工繁育研究进展 | 第18-19页 |
| 2.2 半滑舌鳎性腺发育特征 | 第19-21页 |
| 2.2.1 半滑舌鳎产卵类型 | 第19页 |
| 2.2.2 半滑舌鳎卵母细胞时相划分 | 第19-20页 |
| 2.2.3 半滑舌鳎卵巢发育分期 | 第20-21页 |
| 2.3 半滑舌鳎生殖内分泌研究现状 | 第21页 |
| 3 本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第二章 半滑舌鳎促性腺激素α亚基全长 cDNA 克隆及表达特征分析 | 第23-39页 |
| 1 材料和方法 | 第23-29页 |
| 1.1 实验动物来源 | 第23页 |
| 1.2 卵巢组织学分析 | 第23-24页 |
| 1.3 总 RNA 提取 | 第24-25页 |
| 1.3.1 实验前准备 | 第24页 |
| 1.3.2 总 RNA 提取操作 | 第24-25页 |
| 1.4 半滑舌鳎 CGα基因克隆 | 第25-26页 |
| 1.4.1 cDNA 模板的合成 | 第25页 |
| 1.4.2 半滑舌鳎 CGα基因保守片段的克隆 | 第25页 |
| 1.4.3 CGα基因 cDNA 全长克隆 | 第25-26页 |
| 1.5 序列分析 | 第26-27页 |
| 1.6 RT-PCR 检测 CGαmRNA 组织表达差异 | 第27-29页 |
| 1.6.1 cDNA 第一链合成 | 第27-28页 |
| 1.6.2 CGα基因 RT-PCR 组织表达 | 第28-29页 |
| 1.7 RT-PCR 检测 CGαmRNA 繁殖周期表达 | 第29页 |
| 1.7.1 半滑舌鳎卵巢发育组织学 | 第29页 |
| 1.7.2 cDNA 第一链合成 | 第29页 |
| 1.7.3 CGα基因 RT-PCR 繁殖周期表达 | 第29页 |
| 2 结果 | 第29-36页 |
| 2.1 半滑舌鳎 CGα的 cDNA 全长克隆及序列分析 | 第29-30页 |
| 2.2 CGα氨基酸序列比对及同源性分析 | 第30-31页 |
| 2.3 CGα系统进化分析 | 第31-32页 |
| 2.4 CGαmRNA 在不同组织的表达分析 | 第32-33页 |
| 2.5 半滑舌鳎卵巢组织学及繁殖周期卵巢成熟系数变化 | 第33-35页 |
| 2.5.1 半滑舌鳎卵巢发育组织学特征 | 第33-34页 |
| 2.5.2 雌性半滑舌鳎卵巢成熟系数的繁殖周期变化 | 第34-35页 |
| 2.6 CGαmRNA 在雌性半滑舌鳎繁殖周期的表达模式 | 第35-36页 |
| 3 讨论 | 第36-39页 |
| 3.1 半滑舌鳎 CGα亚基克隆及序列分析 | 第36页 |
| 3.2 雌性半滑舌鳎 CGα mRNA 组织表达特征 | 第36-37页 |
| 3.3 雌性半滑舌鳎 CGα mRNA 繁殖周期表达模式 | 第37-39页 |
| 第三章 半滑舌鳎 FSH 全长 cDNA 克隆及表达特征分析 | 第39-49页 |
| 1 材料和方法 | 第39-42页 |
| 1.1 实验材料 | 第39页 |
| 1.2 卵巢组织学分析 | 第39页 |
| 1.3 总 RNA 提取 | 第39页 |
| 1.4 半滑舌鳎 FSH 基因克隆 | 第39-41页 |
| 1.4.1 cDNA 模板的合成 | 第39页 |
| 1.4.2 半滑舌鳎 FSH 基因保守片段的克隆 | 第39-40页 |
| 1.4.3 FSH 基因 cDNA 全长克隆 | 第40-41页 |
| 1.5 序列分析 | 第41页 |
| 1.6 RT-PCR 检测 FSH mRNA 组织表达差异 | 第41-42页 |
| 1.7 RT-PCR 检测 FSH mRNA 繁殖周期表达 | 第42页 |
| 2 结果 | 第42-46页 |
| 2.1 半滑舌鳎 FSH 的 cDNA 全长克隆及序列分析 | 第42-43页 |
| 2.2 FSH 氨基酸序列比对及同源性分析 | 第43页 |
| 2.3 FSH 系统进化分析 | 第43-44页 |
| 2.4 FSH mRNA 在不同组织的表达分析 | 第44-45页 |
| 2.5 FSHmRNA 在雌性半滑舌鳎繁殖周期的表达模式 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-49页 |
| 3.1 半滑舌鳎 FSH 基因克隆及序列分析 | 第46-47页 |
| 3.2 雌性半滑舌鳎 FSHmRNA 组织表达特征 | 第47页 |
| 3.3 雌性半滑舌鳎 FSHmRNA 繁殖周期表达模式分析 | 第47-49页 |
| 第四章 半滑舌鳎 LH 全长 cDNA 克隆及表达特征分析 | 第49-59页 |
| 1 材料和方法 | 第49-51页 |
| 1.1 实验材料 | 第49页 |
| 1.2 卵巢组织学分析 | 第49页 |
| 1.3 总 RNA 提取 | 第49页 |
| 1.4 半滑舌鳎 LH 基因克隆 | 第49-50页 |
| 1.4.1 cDNA 模板的合成 | 第49页 |
| 1.4.2 半滑舌鳎 LH 基因保守片段的克隆 | 第49-50页 |
| 1.4.3 LH 基因 cDNA 全长克隆 | 第50页 |
| 1.5 序列分析 | 第50-51页 |
| 1.6 RT-PCR 检测 LH mRNA 组织表达差异 | 第51页 |
| 1.7 RT-PCR 检测 LH mRNA 繁殖周期表达 | 第51页 |
| 2 结果 | 第51-56页 |
| 2.1 半滑舌鳎 LH 的 cDNA 全长克隆及序列分析 | 第51-52页 |
| 2.2 LH 氨基酸序列比对及同源性分析 | 第52-53页 |
| 2.3 LH 系统进化分析 | 第53-54页 |
| 2.4 LH mRNA 在不同组织的表达分析 | 第54-55页 |
| 2.5 LHmRNA 在雌性半滑舌鳎繁殖周期的表达模式 | 第55-56页 |
| 3 讨论 | 第56-59页 |
| 3.1 半滑舌鳎 LH 基因克隆及序列分析 | 第56-57页 |
| 3.2 雌性半滑舌鳎 LH 基因在繁殖季节组织的表达特征 | 第57页 |
| 3.3 雌性半滑舌鳎 LHmRNA 周期表达模式分析 | 第57-59页 |
| 第五章 GtH 激素含量测定及周年变化 | 第59-66页 |
| 1 材料和方法 | 第59-61页 |
| 1.1 实验动物 | 第59页 |
| 1.1.1 血浆 FSH/LH 繁殖周期浓度测定 | 第59页 |
| 1.1.2 血浆 FSH/LH 全年变化测定 | 第59页 |
| 1.2 卵巢组织学分析 | 第59页 |
| 1.3 激素测定 | 第59-60页 |
| 1.3.1 标准曲线的制定 | 第59-60页 |
| 1.3.2 激素测定 | 第60页 |
| 1.4 数据分析 | 第60-61页 |
| 2 结果 | 第61-63页 |
| 2.1 雌性半滑舌鳎血浆 FSH 周期变化 | 第61-62页 |
| 2.1.1 血浆 FSH 在雌性半滑舌鳎繁殖周期的变化规律 | 第61页 |
| 2.1.2 雌性半滑舌鳎血浆 FSH 全年变化规律 | 第61-62页 |
| 2.2 雌性半滑舌鳎血浆 LH 周期变化 | 第62-63页 |
| 2.2.1 血浆 LH 在雌性半滑舌鳎繁殖周期的变化规律 | 第62-63页 |
| 2.2.2 雌性半滑舌鳎血浆 LH 全年变化规律 | 第63页 |
| 3 讨论 | 第63-66页 |
| 3.1 雌性半滑舌鳎血浆 FSH 周期变化规律 | 第63-64页 |
| 3.2 雌性半滑舌鳎血浆 LH 周期变化规律 | 第64-65页 |
| 3.3 血浆 GtH 表达与水温调控的关系分析 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-78页 |
| 附录 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 个人简历 | 第80页 |
| 发表的学术论文 | 第80-81页 |
