摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-16页 |
1.1 金属硫蛋白的理化特性 | 第11-12页 |
1.2 金属硫蛋白的分离纯化 | 第12-13页 |
1.3 金属硫蛋白的测定 | 第13-14页 |
1.4 金属硫蛋白-重金属监测生物标志物 | 第14-15页 |
1.5 研究内容及意义 | 第15-16页 |
第2章 金属硫蛋白分离纯化 | 第16-26页 |
2.1 引言 | 第16页 |
2.2 材料与方法 | 第16-19页 |
2.2.1 仪器与试剂 | 第16-17页 |
2.2.2 制备葡聚糖凝胶色谱柱和阴离子交换柱 | 第17页 |
2.2.3 提取蚯蚓 MTs 样品前处理 | 第17-18页 |
2.2.4 分离纯化蚯蚓 MTs | 第18页 |
2.2.5 SDS-PAGE 表征蚯蚓 MTs 不同阶段分离纯化结果 | 第18页 |
2.2.6 MTs 分离纯化方法评价 | 第18页 |
2.2.7 数据处理 | 第18-19页 |
2.3 结果与讨论 | 第19-25页 |
2.3.1 影响样品前处理因素分析 | 第19-21页 |
2.3.2 影响葡聚糖凝胶柱纯化 MTs 因素分析 | 第21-22页 |
2.3.3 影响离子交换柱分离 MT-1、MT-2 因素分析 | 第22-23页 |
2.3.4 蚯蚓 MTs 的 SDS-PAGE 分析 | 第23-24页 |
2.3.5 MTs 分离纯化方法评价 | 第24-25页 |
2.4 结论 | 第25-26页 |
第3章 荧光探针法测定蚯蚓金属硫蛋白 | 第26-35页 |
3.1 引言 | 第26-27页 |
3.2 实验部分 | 第27-28页 |
3.2.1 仪器与试剂 | 第27页 |
3.2.2 蚯蚓体内 MTs 的诱导、提取 | 第27页 |
3.2.3 MTs 测定 | 第27-28页 |
3.2.4 数据处理 | 第28页 |
3.3 结果与讨论 | 第28-34页 |
3.3.1 LMLX- Eu~(3+)-MTs 的荧光光谱特征 | 第28-29页 |
3.3.2 实验条件探讨 | 第29-31页 |
3.3.3 干扰试验 | 第31页 |
3.3.4 实验方法评价 | 第31-33页 |
3.3.5 蚯蚓体内金属硫蛋白含量的测定 | 第33-34页 |
3.4 结论 | 第34-35页 |
第4章 滤纸接触法研究锑-金属硫蛋白 | 第35-41页 |
4.1 引言 | 第35页 |
4.2 材料与方法 | 第35-37页 |
4.2.1 仪器与试剂 | 第35-36页 |
4.2.2 蚯蚓 MTs 的诱导与提取 | 第36页 |
4.2.3 制备 Sb-MTs 标准品 | 第36页 |
4.2.4 Sb-MTs 光谱及 SDS-PAGE 电泳分析 | 第36页 |
4.2.5 Sb-MTs 含量测定 | 第36-37页 |
4.2.6 数据处理 | 第37页 |
4.3 结果与讨论 | 第37-40页 |
4.3.1 Zn-MTs/EDTA 最佳比例研究 | 第37-38页 |
4.3.2 Sb/apo-MTs 最佳比例研究 | 第38页 |
4.3.3 Sb-MTs 光谱及 SDS-PAGE 电泳分析 | 第38-39页 |
4.3.4 Sb 对蚯蚓 MTs 的诱导效应 | 第39-40页 |
4.4 结论 | 第40-41页 |
第5章 金属硫蛋白-土壤重金属污染生物标志物 | 第41-49页 |
5.1 引言 | 第41页 |
5.2 材料与方法 | 第41-43页 |
5.2.1 仪器与试剂 | 第41-42页 |
5.2.2 样品前处理 | 第42页 |
5.2.3 金属硫蛋白提取纯化 | 第42页 |
5.2.4 样品测定 | 第42-43页 |
5.2.5 数据处理 | 第43页 |
5.3 结果与讨论 | 第43-48页 |
5.3.1 蚯蚓对重金属的耐受性 | 第43-44页 |
5.3.2 蚯蚓 MTs 对不同金属响应灵敏度分析 | 第44-45页 |
5.3.3 蚯蚓体内 MTs 诱导量与环境金属含量相关性分析 | 第45-46页 |
5.3.4 不同金属与 MTs 结合比例 | 第46-47页 |
5.3.5 不同金属与蚯蚓 MT-1、MT-2 的诱导比例 | 第47-48页 |
5.4 结论 | 第48-49页 |
第6章 结论与展望 | 第49-51页 |
6.1 结论 | 第49-50页 |
6.2 展望 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
攻读学位期间取得的科研成果 | 第60页 |