| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-22页 |
| 1.1 本课题的研究意义 | 第9-10页 |
| 1.1.1 本课题的研究背景 | 第9-10页 |
| 1.1.2 选题意义 | 第10页 |
| 1.2 血管钙化形成机制 | 第10-15页 |
| 1.2.1 血管钙化 | 第10-12页 |
| 1.2.2 血管钙化与炎症 | 第12-15页 |
| 1.3 硒与硒蛋白 | 第15-20页 |
| 1.3.1 SelS | 第16-18页 |
| 1.3.2 其它硒蛋白 | 第18-20页 |
| 1.4 SIRNA 沉默技术 | 第20-22页 |
| 2 实验部分 | 第22-36页 |
| 2.1 实验所用仪器 | 第22页 |
| 2.2 实验所用试剂 | 第22-23页 |
| 2.3 试剂配制方法 | 第23-27页 |
| 2.3.1 用于细胞培养的试剂 | 第23-25页 |
| 2.3.2 用于细胞转染的试剂配制 | 第25页 |
| 2.3.3 碱性磷酸酶(ALP)活性的测定试剂 | 第25-26页 |
| 2.3.4 测定蛋白质含量所用试剂 | 第26页 |
| 2.3.5 western blot 所用试剂 | 第26-27页 |
| 2.4 实验方法 | 第27-36页 |
| 2.4.1 大鼠胸主动脉血管平滑肌细胞的原代培养及钙化模型的建立 | 第27-28页 |
| 2.4.2 Folin-酚试剂法测定蛋白质含量 | 第28-29页 |
| 2.4.3 碱性磷酸酶活性的测定 | 第29-30页 |
| 2.4.4 细胞内钙含量的测定 | 第30页 |
| 2.4.5 蛋白免疫印迹 | 第30-31页 |
| 2.4.6 SelS 的小分子 RNA 干扰(siRNA) | 第31-32页 |
| 2.4.7 实时荧光定量 PCR(RT-PCR) | 第32-35页 |
| 2.4.8 统计学方法 | 第35-36页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第36-49页 |
| 3.1 大鼠 SELS(SELS)基因沉默条件探索 | 第36-39页 |
| 3.2 SELS 基因沉默对血管钙化的影响 | 第39-42页 |
| 3.3 TNF-α对血管钙化的影响 | 第42-43页 |
| 3.4 SELS 沉默对 TNF-α促进血管钙化作用的影响 | 第43-46页 |
| 3.5 补硒对 TNF-α诱导的血管钙化的影响 | 第46-49页 |
| 4 总结 | 第49-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-62页 |
