| 缩写词 | 第8-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 第一章 引言 | 第14-26页 |
| 1 研究进展 | 第14-24页 |
| 1.1 麻类作物组织培养研究概况 | 第14-20页 |
| 1.1.1 顶芽与腋芽快速繁殖 | 第15-16页 |
| 1.1.2 花药与杂种胚培养 | 第16-17页 |
| 1.1.3 原生质体与悬浮细胞培养 | 第17页 |
| 1.1.4 体细胞胚发生 | 第17-18页 |
| 1.1.5 器官发生 | 第18-20页 |
| 1.2 麻类作物转化方法的研究 | 第20-22页 |
| 1.2.1 农杆菌介导法 | 第20-21页 |
| 1.2.2 基因枪法 | 第21-22页 |
| 1.2.3 花粉管通道法 | 第22页 |
| 1.2.4 其他研究 | 第22页 |
| 1.3 植物遗传转化中抗虫性的研究 | 第22-24页 |
| 1.3.1 棉花的抗虫基因遗传转化的研究 | 第23页 |
| 1.3.2 麻类的抗虫基因遗传转化的研究 | 第23页 |
| 1.3.3 Bt+pta双价抗虫基因遗传转化的研究 | 第23-24页 |
| 2 本研究的内容和目标 | 第24-26页 |
| 2.1 研究内容 | 第24页 |
| 2.1.1 红麻高效再生体系优化研究内容 | 第24页 |
| 2.1.2 红麻遗传转化研究内容 | 第24页 |
| 2.2 研究目标 | 第24-26页 |
| 2.2.1 红麻高效再生体系优化研究预期目标 | 第24-25页 |
| 2.2.2 农杆菌介导Bt-pta基因转化红麻的预期研究目标 | 第25-26页 |
| 第二章 红麻高效再生体系的优化研究 | 第26-48页 |
| 1 材料与方法 | 第26-30页 |
| 1.1 试验材料 | 第26-27页 |
| 1.1.1 供试材料 | 第26页 |
| 1.1.2 仪器与试剂 | 第26-27页 |
| 1.2 试验方法 | 第27-30页 |
| 1.2.1 红麻愈伤组织的培养 | 第27-28页 |
| 1.2.2 外植体直接诱导不定芽的分化培养 | 第28-29页 |
| 1.2.3 无根苗的生根培养 | 第29页 |
| 1.2.4 再生植株的移栽 | 第29-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-44页 |
| 2.1 愈伤组织的生长与分化 | 第30-35页 |
| 2.1.1 愈伤组织的生长 | 第30-33页 |
| 2.1.2 愈伤组织的分化 | 第33-35页 |
| 2.2 不定芽诱导的正交试验结果 | 第35-41页 |
| 2.2.1 诱导不定芽直接分化的最佳外植体 | 第35-37页 |
| 2.2.2 TDZ与NAA子叶不定芽诱导的影响 | 第37-38页 |
| 2.2.3 实验组的正交设计结果 | 第38页 |
| 2.2.4 AgNO_3的配对样本t检验 | 第38-40页 |
| 2.2.5 不同品种间不定芽诱导率的差异 | 第40-41页 |
| 2.3 无根苗根的诱导 | 第41-42页 |
| 2.4 组培苗田间性状观察 | 第42-43页 |
| 2.5 结论 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-48页 |
| 3.1 不同外植体的愈伤组织诱导及不定芽分化的差异 | 第44-45页 |
| 3.2 激素对愈伤组织及不定芽分化的影响 | 第45-46页 |
| 3.3 活性炭及AgNO_3对不定芽诱导的影响 | 第46-47页 |
| 3.4 基因型对不定芽诱导的影响 | 第47页 |
| 3.5 组培中产生的突变体 | 第47-48页 |
| 第三章 双价抗虫基因Bt-pta转化红麻的初步研究 | 第48-63页 |
| 1 材料与方法 | 第48-55页 |
| 1.1 试验材料 | 第48-50页 |
| 1.1.1 红麻来源 | 第48页 |
| 1.1.2 供试质粒 | 第48页 |
| 1.1.3 药品与试剂 | 第48-50页 |
| 1.1.4 试验仪器 | 第50页 |
| 1.2 试验方法 | 第50-55页 |
| 1.2.1 农杆菌工程菌的制备 | 第50-53页 |
| 1.2.2 福红992对除草剂(Basta)临界浓度的筛选 | 第53页 |
| 1.2.3 农杆菌介导红麻子叶的遗传转化 | 第53-54页 |
| 1.2.4 红麻转基因植株的初步验证 | 第54-55页 |
| 2 结果与分析 | 第55-59页 |
| 2.1 转化工程菌的制备 | 第55-56页 |
| 2.1.1 质粒酶切验证结果与分析 | 第55页 |
| 2.1.2 农杆菌提取质粒PCR检测结果与分析 | 第55-56页 |
| 2.2 除草剂Basta临界浓度的筛选结果 | 第56-57页 |
| 2.3 转基因红麻子叶的选择培养 | 第57页 |
| 2.4 转基因红麻的初步检测 | 第57-59页 |
| 2.5 结论 | 第59页 |
| 3 讨论 | 第59-63页 |
| 3.1 提取质粒与红麻DNA | 第59-60页 |
| 3.1.1 质粒提取 | 第59-60页 |
| 3.1.2 基因组DNA提取 | 第60页 |
| 3.2 影响外源基因整合的因素 | 第60-62页 |
| 3.2.1 农杆菌的因素 | 第60-61页 |
| 3.2.2 侵染与共培养时间 | 第61页 |
| 3.2.3 乙酰丁香酮的浓度 | 第61-62页 |
| 3.3 受体植株与外源基因的因素 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 附录 | 第69-71页 |
| 1. TIANGENE公司质粒小提试剂盒方法 | 第69页 |
| 2. 对红麻基因组DNA的提取及纯化方法 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
