| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 英文缩略词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一部分 高糖诱导HUVECs损伤模型的建立 | 第17-24页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第17-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.1 复苏与冻存 | 第18-19页 |
| 2.2 培养与传代 | 第19页 |
| 2.3 实验分组 | 第19页 |
| 2.4 不同浓度葡萄糖细胞形态学观察 | 第19页 |
| 2.5 MTT 法检测不同时间、不同浓度葡萄糖对细胞存活率的影响 | 第19-20页 |
| 2.6 Hoechst33258 染色观察细胞凋亡 | 第20页 |
| 2.7 统计学方法 | 第20页 |
| 3 实验结果 | 第20-24页 |
| 3.1 不同浓度葡萄糖对HUVECs形态学的影响 | 第20-21页 |
| 3.2 不同时间、不同浓度葡萄糖对 HUVECs 细胞活力的影响 | 第21-23页 |
| 3.3 Hoechst 33258 染色观察细胞凋亡 | 第23-24页 |
| 第二部分 黄芪甲苷对高糖诱导的HUVECs细胞凋亡的影响 | 第24-33页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2 实验方法 | 第25-29页 |
| 2.1 细胞培养 | 第25页 |
| 2.2 药物处理 | 第25页 |
| 2.3 不同浓度AS-IV对细胞存活率的影响 | 第25页 |
| 2.4 实验分组 | 第25页 |
| 2.5 Hoechst 33258 染色观察细胞凋亡形态 | 第25-26页 |
| 2.6 流式细胞术检测细胞凋亡率 | 第26页 |
| 2.7 ELISA法检测HUVECs上清液中TNF-α和IL-1β的含量 | 第26页 |
| 2.8 荧光定量PCR检测HUVECs中TNF-α和IL-1β mRNA相对变化 | 第26-28页 |
| 2.9 统统计学方法 | 第28-29页 |
| 3 实验结果 | 第29-33页 |
| 3.1 不同浓度AS-IV对细胞存活率影响 | 第29页 |
| 3.2 AS-IV对高糖诱导HUVECs凋亡的影响 | 第29-31页 |
| 3.3 AS-IV对高糖环境下HUVECs上清液中TNF-α和IL-1β含量的影响 | 第31-32页 |
| 3.4 AS-IV对高糖诱导的HUVECs的TNF-α和IL-1β mRNA表达的影响 | 第32-33页 |
| 第三部分 黄芪甲苷通过JNK信号通路保护高糖诱导的HUVECs损伤的机制研究 | 第33-43页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第33-34页 |
| 2 实验方法 | 第34-38页 |
| 2.1 细胞培养 | 第34-35页 |
| 2.2 药物处理 | 第35页 |
| 2.3 实验分组 | 第35页 |
| 2.4 Western blot法检测HUVECs中JNK、p-JNK、ASK1、p-ASK1、Cyt-c、Caspase-3、Caspase-9 的表达 | 第35-38页 |
| 2.7 统计学处理 | 第38页 |
| 3 实验结果 | 第38-43页 |
| 3.1 AS-IV对高糖诱导的HUVECs中JNK、p-JNK表达的影响 | 第38-39页 |
| 3.2 AS-IV对高糖诱导的HUVECs中ASK1、p-ASK1表达的影响 | 第39-40页 |
| 3.3 AS-IV对高糖诱导的HUVECs中Bax、Bcl-2 表达的影响 | 第40-42页 |
| 3.4 AS-IV对高糖诱导的HUVECs中Cyt-c、Caspase-9、Caspase-3表达的影响 | 第42-43页 |
| 讨论 | 第43-55页 |
| 1 血管内皮功能障碍与2型糖尿病及其并发症 | 第43-44页 |
| 2 糖尿病葡萄糖毒性与炎症学说的发病机制 | 第44-46页 |
| 3 JNK信号通路与2型糖尿病及细胞凋亡 | 第46-52页 |
| 4 AS-IV保护高糖诱导的HUVECs损伤机制 | 第52-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-70页 |
| 综述 | 第70-82页 |
| 参考文献 | 第75-82页 |
| 个人简介 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
