| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第11-12页 |
| 2 文献综述 | 第12-22页 |
| 2.1 miRNAs与骨骼肌发育 | 第12-17页 |
| 2.1.1 miRNAs的来源及功能 | 第12页 |
| 2.1.2 miRNAs与成肌分化 | 第12-14页 |
| 2.1.3 miRNAs与骨骼肌生理学 | 第14-15页 |
| 2.1.4 miRNAs与骨骼肌疾病 | 第15-16页 |
| 2.1.5 miRNAs与肌肉萎缩 | 第16-17页 |
| 2.2 循环miRNAs与骨骼肌发育及疾病 | 第17-19页 |
| 2.2.1 循环miRNAs的运输 | 第17页 |
| 2.2.2 循环miRNAs与骨骼肌病理学 | 第17-18页 |
| 2.2.3 循环miRNAs与运动 | 第18-19页 |
| 2.3 lncRNAs与骨骼肌发育及疾病 | 第19-22页 |
| 2.3.1 lncRNAs的分类 | 第19页 |
| 2.3.2 lncRNAs与骨骼肌基因转录 | 第19-20页 |
| 2.3.3 lncRNAs与成肌分化 | 第20-21页 |
| 2.3.4 lncRNAs与骨骼肌疾病 | 第21-22页 |
| 2.3.5 循环lncRNAs与疾病诊断 | 第22页 |
| 3 研究方法 | 第22-35页 |
| 3.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第22-23页 |
| 3.1.2 主要仪器设备 | 第23页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第23-25页 |
| 3.2 实验方法 | 第25-35页 |
| 3.2.1 模型的建立 | 第25页 |
| 3.2.2 样品采集与处理 | 第25页 |
| 3.2.3 总RNA的提取、检测和定量 | 第25-26页 |
| 3.2.4 反转录 | 第26-27页 |
| 3.2.5 引物设计 | 第27页 |
| 3.2.6 qRT-PCR反应 | 第27-28页 |
| 3.2.7 全蛋白的提取、检测和定量 | 第28-29页 |
| 3.2.8 Western blotting | 第29-31页 |
| 3.2.9 冰冻切片的制备 | 第31页 |
| 3.2.10 免疫荧光 | 第31-32页 |
| 3.2.11 基因芯片 | 第32页 |
| 3.2.12 miRNAs反转录 | 第32页 |
| 3.2.13 miRNAs引物设计 | 第32-34页 |
| 3.2.14 miRNAs qRT-PCR | 第34页 |
| 3.2.15 统计学处理 | 第34-35页 |
| 4 实验结果 | 第35-44页 |
| 4.1 小鼠肌肉萎缩模型的验证 | 第35-40页 |
| 4.1.1 小鼠在尾悬吊及恢复期间体重及肌肉重量的变化 | 第35-37页 |
| 4.1.2 比目鱼肌纤维横截面积在失重性肌萎缩中的变化 | 第37-38页 |
| 4.1.3 失重性肌萎缩中比目鱼肌FoxO3a、Atrogin-1、MuRF1的mRNA及蛋白表达情况 | 第38-40页 |
| 4.2 比目鱼肌miRNA的表达谱变化 | 第40-44页 |
| 4.2.1 比目鱼肌miRNA基因芯片结果 | 第40-42页 |
| 4.2.2 比目鱼肌miRNA表达情况 | 第42-44页 |
| 5 分析讨论 | 第44-49页 |
| 5.1 尾悬吊诱导小鼠肌肉萎缩模型的构建评估 | 第44-46页 |
| 5.2 失重性肌萎缩过程中比目鱼肌miRNAs表达谱的变化 | 第46-49页 |
| 6 结论 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 个人简历 在读期间发表的学术论文与研究成果 | 第57页 |
