| 英文缩写词表 | 第9-10页 |
| 绪论 | 第10-12页 |
| 第一章 文献回顾 | 第12-38页 |
| 第一节 结直肠癌的诊断和治疗进展 | 第12-24页 |
| 一、分子病理学 | 第12-13页 |
| 二、影像学 | 第13-14页 |
| 三、手术治疗 | 第14-16页 |
| 四、结直肠癌肝转移 | 第16-18页 |
| 五、化疗和放疗 | 第18-20页 |
| 六、生物学治疗 | 第20-23页 |
| (一) 免疫治疗 | 第20-21页 |
| (二) 基因治疗 | 第21-23页 |
| (三) 干细胞治疗 | 第23页 |
| 七、结直肠癌相关基因 | 第23-24页 |
| 第二节 同源盒基因与肿瘤 | 第24-31页 |
| 一、同源盒基因简介 | 第25页 |
| 二、同源盒基因在肿瘤中的表达及作用 | 第25-30页 |
| 三、分子生物学研究方法 | 第30页 |
| 四、结语 | 第30-31页 |
| 第三节 苯乙酸与肿瘤 | 第31-38页 |
| 一、苯乙酸简介 | 第31-32页 |
| 二、关于苯乙酸抗肿瘤的研究 | 第32-37页 |
| 三、国内关于苯乙酸抗肿瘤的报道 | 第37页 |
| 四、结语 | 第37-38页 |
| 第二章 材料与方法 | 第38-52页 |
| 第一节 材料 | 第38-46页 |
| 一、细胞株及诱导分化剂 | 第38页 |
| (一) 细胞株 | 第38页 |
| (二) 诱导分化剂 | 第38页 |
| 二、主要试剂与仪器 | 第38-41页 |
| (一) 主要试剂 | 第38-39页 |
| (二) 主要试剂配制及试剂盒 | 第39-40页 |
| (三) 主要实验设备 | 第40-41页 |
| 三、PCR 引物序列 | 第41-46页 |
| 第二节 方法 | 第46-52页 |
| 一、细胞株的体外培养和传代 | 第46-47页 |
| (一) 正常人结肠上皮细胞(IEC)的分离和体外培养 | 第46页 |
| (二) 结直肠癌细胞系HCT-8 细胞的体外培养 | 第46-47页 |
| 二、细胞增殖检测 | 第47页 |
| 三、流式细胞术分析细胞周期 | 第47页 |
| 四、电子显微镜观察细胞超微结构 | 第47-48页 |
| 五、HOX 基因引物设计 | 第48页 |
| 六、逆转录多聚酶链式反应(RT-PCR)检测HOX 基因m RNA 表达 | 第48-51页 |
| (一) RNA 提取 | 第48-49页 |
| (二) RNA 纯度测定 | 第49页 |
| (三) 逆转录第一链cDNA 合成 | 第49-50页 |
| (四) PCR | 第50-51页 |
| 七、PCR 产物电泳检测 | 第51页 |
| 八、统计学处理 | 第51-52页 |
| 第三章 结果 | 第52-60页 |
| 第一节 PA 对HCT-8 细胞增殖抑制和诱导分化作用 | 第52-53页 |
| 一、PA 对HCT-8 细胞增殖的影响 | 第52页 |
| 二、PA 对HCT-8 细胞周期的影响 | 第52页 |
| 三、PA 对HCT-8 细胞形态及超微结构的影响 | 第52-53页 |
| 第二节 PA 对HCT-8 细胞中HOX 基因组表达的影响 | 第53-54页 |
| 一、正常人结肠上皮细胞中HOX 基因组mRNA 的表达 | 第53页 |
| 二、结直肠癌HCT-8 细胞中HOX 基因组mRNA 的表达 | 第53-54页 |
| 三、PA 对结直肠癌HCT-8 细胞中HOX 基因组m RNA 表达的影响 | 第54页 |
| 第三节 PA 对HCT-8 细胞中HOX-I 基因家族表达的影响 | 第54-59页 |
| 一、正常人结肠上皮细胞中HOXA、B、C、D 族基因mRNA 的表达 | 第54页 |
| 二、HCT-8 中HOXA、B、C、D 族基因m RNA 的表达 | 第54页 |
| 三、PA 对HCT-8 中HOXA、B、C、D 族基因m RNA 表达的影响 | 第54-55页 |
| 四、定性分析小结 | 第55-57页 |
| 五、定量统计分析 | 第57-59页 |
| 第四节 PA 对HCT-8 细胞中HOX 靶基因表达的影响 | 第59-60页 |
| 结果部分附图 | 第60-98页 |
| 第四章 讨论 | 第98-108页 |
| 结论 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-130页 |
| 攻读博士其间发表的学术论文及其他成果 | 第130-132页 |
| 中文摘要 | 第132-139页 |
| 英文摘要 | 第139页 |
| 致谢 | 第150页 |
