| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 前言 | 第12-16页 |
| 第2章 围产期PFOS暴露对仔鼠海马BDNF/TrkB/CREB信号通路的影响 | 第16-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-22页 |
| 2.2.1 动物饲养与处理 | 第18页 |
| 2.2.2 实验动物生长发育情况的观察 | 第18页 |
| 2.2.3 实验动物样本的收集 | 第18页 |
| 2.2.4 HE染色 | 第18-19页 |
| 2.2.5 动物组织RNA的提取 | 第19页 |
| 2.2.6 RNA浓度及完整性的检测 | 第19-20页 |
| 2.2.7 cDNA的合成 | 第20页 |
| 2.2.8 QPCR | 第20-22页 |
| 2.3 统计分析 | 第22页 |
| 2.4 结果 | 第22-25页 |
| 2.4.1 围产期PFOS暴露对出生后21天幼鼠存活率的影响 | 第22页 |
| 2.4.2 围产期PFOS暴露对出生后幼鼠体重的影响 | 第22页 |
| 2.4.3 围产期PFOS暴露对出生后21天幼鼠脑组织病理形态的影响 | 第22-24页 |
| 2.4.4 围产期PFOS暴露对出生后21天幼鼠海马组织BDNF、TrkB及CREB mRNA表达的影响 | 第24页 |
| 2.4.5 围产期PFOS暴露对出生后21天幼鼠海马组织Syp、Syn1mRNA表达的影响 | 第24-25页 |
| 2.5 讨论 | 第25-27页 |
| 2.6 小结 | 第27-28页 |
| 第3章 PFOS暴露对SH-SY5Y细胞BDNF/Trk B/CREB信号通路的影响 | 第28-44页 |
| 3.1 实验材料 | 第28-30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-38页 |
| 3.2.1 主要试剂的配置 | 第30-31页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第31-32页 |
| 3.2.3 MTT检测细胞活力 | 第32页 |
| 3.2.4 细胞RNA的提取 | 第32页 |
| 3.2.5 RNA浓度及完整性的检测 | 第32-33页 |
| 3.2.6 cDNA的合成 | 第33-34页 |
| 3.2.7 QPCR | 第34-35页 |
| 3.2.8 酶联免疫分析法检测BDNF基因的蛋白表达水平 | 第35-36页 |
| 3.2.9 Western blot检测蛋白表达 | 第36-38页 |
| 3.3 统计分析 | 第38页 |
| 3.4 结果 | 第38-42页 |
| 3.4.1 PFOS对SH-SY5Y细胞存活率的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.2 PFOS对SH-SY5Y细胞形态的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.3 PFOS对SH-SY5Y细胞BDNF表达的影响 | 第40页 |
| 3.4.4 PFOS对SH-SY5Y细胞TrkB与CREB蛋白表达的影响 | 第40-42页 |
| 3.5 讨论 | 第42-43页 |
| 3.6 小结 | 第43-44页 |
| 第4章 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 文献综述 | 第54-66页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 主要英文缩略语（按英文字母排序） | 第66-67页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
