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PPARγ在铜绿假单胞菌信号分子3-O-C12-HSL阻碍Mo-DCs成熟中的作用

摘要第3-7页
Abstract第7-11页
引言第14-17页
第一章 3-O-C_(12)-HSL通过PPARγ调节Mo-DCs成熟与功能第17-34页
    1.1 材料第17-19页
        1.1.1 细胞第17页
        1.1.2 耗材第17页
        1.1.3 主要试剂第17-18页
        1.1.4 主要仪器第18页
        1.1.5 各种实验试剂的配制第18-19页
    1.2 方法第19-22页
        1.2.1 配体筛选实验第19-20页
        1.2.2 Mo-DCs的分离与培养第20页
        1.2.3 3-O-C_(12)-HSL对Mo-DCs活力的影响第20页
        1.2.4 mRNA定量检测第20-21页
        1.2.5 抗原吞噬实验第21页
        1.2.6 Mo-DCs表型检测第21页
        1.2.7 细胞因子浓度检测第21页
        1.2.8 CD4~+Th细胞分离与培养第21-22页
        1.2.9 混合淋巴细胞实验第22页
        1.2.10 蛋白免疫印迹实验第22页
        1.2.11 数据分析第22页
    1.3 结果第22-30页
        1.3.1 3-O-C_(12)-HSL与PPARγ结合第22-23页
        1.3.2 Mo-DCs的培养第23-24页
        1.3.3 3-O-C_(12)-HSL影响Mo-DCs活力第24页
        1.3.4 3-O-C_(12)-HSL影响Mo-DCs中PPAR γ mRNA的表达第24-25页
        1.3.5 3-O-C_(12)-HSL通过PPARγ调节Mo-DCs吞噬功能第25-26页
        1.3.6 3-O-C_(12)-HSL通过PPARγ调节Mo-DCs表面分子表达水平第26-27页
        1.3.7 3-O-C_(12)-HSL通过PPAR γ调节Mo-DCs细胞因子的分泌第27-28页
        1.3.8 3-O-C_(12)-HSL处理的Mo-DCs调节CD4~+Th细胞增殖第28-29页
        1.3.9 3-O-C_(12)-HSL处理的Mo-DCs调节CD4~+Th细胞分泌细胞因子第29-30页
        1.3.10 3-O-C_(12)-HSL通过PPAR γ调节JNK MAPK信号通路第30页
    1.4 讨论第30-34页
第二章 3-O-C_(12)-HSL阻碍Mo-DCs成熟过程中lncRNA表达谱的变化第34-45页
    1.1 材料第34-35页
        1.1.1 细胞第34页
        1.1.2 耗材第34页
        1.1.3 主要试剂第34页
        1.1.4 主要仪器第34页
        1.1.5 各种实验试剂的配制第34-35页
    1.2 方法第35-37页
        1.2.1 Mo-DCs的诱导与培养第35页
        1.2.2 样品总RNA抽提与检测第35页
        1.2.3 cDNA样品合成、标记和杂交第35页
        1.2.4 图像采集和数据分析第35-36页
        1.2.5 lncRNA lnc-DC的生物信息学预测第36页
        1.2.6 lncRNA和mRNA的定量检测第36-37页
    1.3 结果第37-42页
        1.3.1 样品总RNA的质量鉴定第37-38页
        1.3.2 芯片杂交结果第38-39页
        1.3.3 表达差异lncRNA的散点图分析第39页
        1.3.4 表达差异lncRNA的聚类分析第39-40页
        1.3.5 3-O-C_(12)-HSL下调lncRNA lnc-DC表达水平第40页
        1.3.6 lncRNA lnc-DC的生物信息学分析第40-41页
        1.3.7 3-O-C_(12)-HSL下调C-Fos和C-Jun的mRNA表达水平第41-42页
    1.4 讨论第42-45页
结语第45-46页
参考文献第46-50页
文献综述 铜绿假单胞菌信号分子3-O-C_(12)-HSL与宿主细胞的相互作用第50-58页
    参考文献第54-58页
附录第58-60页
在校期间发表论文情况第60-61页
统计学审核证明第61-62页
致谢第62页

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